靶向MIF的siRNA对大肠癌细胞生物学行为的影响

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背景巨噬细胞移动抑制因子(Macrophage Migration Inhibitory Factor , MIF)具有信号调节、免疫活性、促进炎症反应、催化功能以及内分泌功能等多种生物学功能。它还可以刺激细胞增殖、分化、迁移,促进肿瘤血管生成,在肿瘤的发生、发展和转移中担任重要角色。MIFsiRNA(the small interfering RNA of macrophage migration inhibitory factor)是一种化学合成的MIF的特异性siRNA,它能够与MIF的mRNA同源序列特异性的结合,导致MIF的mRNA序列分解,MIF蛋白的翻译受到抑制,从而抑制MIF的生物学功能。因此,我们推测MIFsiRNA可以抑制大肠癌细胞的增殖、侵袭,增加细胞的凋亡。目的研究化学合成的MIFsiRNA对大肠癌细胞生物学行为的影响,并探讨其可能的机制,为防治大肠癌开辟新的途径。方法1、荧光的实验组用100 nM/ml浓度的FAMsiRNA转染大肠癌细胞,空白对照组不添加任何siRNA进行处理。2、阳性对照组用10~100 nM/ml浓度的MIFsiRNA转染大肠癌细胞,阴性对照组用10~100 nM/ml非特异性的siRNA转染大肠癌细胞,空白对照组不添加任何siRNA进行处理。3、RT-PCR检测MIFsiRNA组、非特异性的siRNA组和空白对照组转染大肠癌细胞后MIF、CD74、Caspases3、Caspases8、E-Cadherin、Tiam1在mRNA水平上的表达量。4、MTT法观察MIFsiRNA、非特异性的siRNA和空白组对大肠癌CT-26细胞增殖的影响。5、酶联免疫吸附法(ELISA)检测MIFsiRNA和非特异性的siRNA转染CT-26细胞后培养液中MIF蛋白的表达量。6、微孔迁移法检测MIFsiRNA和非特异性的siRNA对CT-26细胞体外侵袭的影响。7、流式细胞仪检测MIFsiRNA和非特异性的siRNA对CT-26细胞凋亡的影响。8、Western blot检测MIFsiRNA和非特异性的siRNA对细胞内MIF、CD74、Caspases8蛋白表达量的影响。结果1、荧光siRNA转染到细胞内。2、MIFsiRNA抑制了CT-26细胞的增殖,呈时间-剂量依赖性,非特异性的siRNA与空白组对CT-26细胞没有影响。3、100 nM/ml MIFsiRNA转染后细胞表达MIF、CD74、Tiam1量下降,E-Cadherin、Caspases3、Caspases8表达量升高,与非特异性的siRNA及空白组比较有显著差异,空白组与非特异性的siRNA比较无差异。4、100 nM/ml MIFsiRNA转染细胞24小时后,外分泌MIF蛋白的表达降低,空白组与非特异性的siRNA对外分泌MIF蛋白的表达无影响。5、100 nM/ml MIFsiRNA转染细胞24小时后,细胞穿透聚碳酸酯膜显著减少,与非特异性的siRNA及空白组比较有显著差异,空白组与非特异性的siRNA比较无差异。6、100 nM/ml MIFsiRNA转染细胞24小时后,细胞凋亡增加,较非特异性的siRNA及空白组有显著差异,空白组与非特异性的siRNA无差异7、100 nM/ml MIFsiRNA转染细胞48小时后,细胞内MIF、CD74蛋白表达下降,Caspases8蛋白表达上调,与非特异性的siRNA及空白组比较有显著差异,但非特异性的siRNA与空白组比较无差异。结论1、MIFsiRNA抑制了大肠癌细胞CT-26的增殖,其机制可能为MIFsiRNA降低了MIF与CD74的结合,下调MEK/ERK途径,细胞增殖下降。2、MIFsiRNA抑制了大肠癌细胞CT-26的侵袭,其机制可能为MIFsiRNA导致MIF及Tiam1的表达下降,并导致E-Cadherin的表达上调。3、MIFsiRNA上调了大肠癌细胞CT-26的凋亡,其机制可能为MIFsiRNA导致MIF表达下降,上调Caspases3和Caspaese8的表达。
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