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目的： 本课题首先通过实验验证DU145细胞能高表达IL-8;然后，进一步采用流式细胞术、MTT法、Transwell试验及免疫荧光实验探讨IL-8抗体和IL-8R抗体能加速DU145细胞凋亡，并抑制其增殖和迁移，为临床应用IL-8抗体和IL-8R抗体治疗雄激素非依赖性PCa提供新的靶点和理论依据。 方法： 1.DU145细胞培养上清IL-8水平的检测:分别取DU145细胞培养0h、12h、24h和48h上清500ul，分为0h组（即为对照组）、12h组、24h组和48h组四个组，采用IL-8ELISA检测试剂盒，检测不同培养时间培养上清IL-8含量。 2.流式细胞术检测DU145细胞凋亡:选取DU145细胞铺板，每孔1ml，细胞浓度5×105/ml，分别加入IL-8抗体，IL-8R抗体及加入等量培养基作为对照组，即anti-IL-8组、anti-IL-8R组和Control组。24h后分别检测三组肿瘤细胞凋亡情况。 3.MTT法检测DU145细胞增殖活性:应用MTT法分别检测anti-IL-8组、anti-IL-8R组和Control组肿瘤细胞增殖情况。 4.Transwell试验检测DU145细胞迁移能力:应用Transwell试验分别检测anti-IL-8组、anti-IL-8R组和Control组肿瘤细胞穿过生物膜形成克隆数多少。 5.免疫荧光结核激光共聚焦显微镜检测DU145细胞HMGB1蛋白表达:应用免疫荧光结核激光共聚焦显微镜检测分别检测anti-IL-8组、anti-IL-8R组和Control组肿瘤细胞HMGB1蛋白表达量。 6.统计学方法:计量数据以均数加减标准差((x)±s)表示，两组间差异比较采用t检验。检验水准α=0.05，P＜0.05为差异有统计学意义。 结果： 1.酶联免疫法ELISA检测IL-8浓度:0h组、12h组、24h组和48h组DU145细胞培养上清IL-8浓度分别为(0.03±0.02)ng/ml、（1.21±0.05）ng/ml、（3.10±0.05）ng/ml、（3.91±0.06）ng/ml。各组之间均有统计学差异（均有P＜0.001）。 2.流式细胞术检测DU145细胞凋亡率:结果显示与空白对照组相比，DU145细胞经IL-8/IL-8R刺激后凋亡率分别为（9.92±1.02）％和（10.34±1.07）％，均比空白对照组(1.60±0.37)％，且有统计学差异（T=21.2，P＜0.001;T=12.5，P＜0.001）。 3.MTT法检测DU145细胞增殖活性:加入IL-8抗体和IL-8R抗体后DU145细胞克隆形成减少，分别为（1.31±0.10）和（1.07±0.14），两组OD值均显著低于空白对照组（3.02±0.08），且有统计学差异（T=9.3，P＜0.001;T=5.4，P＜0.001）。 4.Transwell检测DU145细胞迁移能力:加入IL-8抗体组或IL-8R抗体组细胞穿过生物膜形成克隆数分别为（49.67±3.54）个、(49.83±3.44)个，均低于未加抗体的空白对照组克隆个数（164.83±4.63）个，且有统计学差异(T=19.3，P＜0.001;T=9.3，P＜0.001)。 5.免疫荧光检测DU145细胞HMGB1蛋白表达:未加抗体的空白对照组细胞呈现梭形较多，胞质丰富，HMGB1表现为红色大颗粒状或小块状。而加入IL-8/IL-8R抗体后，细胞多呈现圆形，胞质减少，HMGB1表达信号弱，仅呈现微粒状或粉尘状。 结论： 1.培养雄激素非依赖性前列腺癌DU145细胞时细胞可分泌IL-8，且随时间延长，分泌量增加。 2.IL-8抗体和IL-8R抗体可在体外条件下促进DU145细胞凋亡，并抑制该肿瘤细胞增殖和迁移。