透明质酸代谢途径优化及透明质酸寡糖合成

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透明质酸(Hyaluranic acid,HA)广泛应用于医学、化妆品、食用等领域,市场需求日益增大,预计2019年将达到98.5亿美元。HA的生物活性取决于其分子量(Mw),相比于大分子量的HA,HA寡糖由于具有重要的生理活性与特殊生理功能,在医药领域具有广阔的应用前景。当前,HA寡糖的制备方式普遍是先通过动物组织提取或微生物发酵获得HA,再通过物理法、化学法或酶解法获得,这样的制备方式工艺复杂,经济性差,无法满足市场对HA寡糖的需求。随着代谢工程和分子生物学领域的重大进展,通过构建工程菌株一步法发酵获得HA寡糖的方式非常有前景和吸引力。兽疫链球菌(Streptococcus zooepidemicus)和枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)在生物合成HA或HA寡糖方面有自身的优势,市场上现有的HA超过90%是来自于它们所生产的,它们在生物发酵HA或HA寡糖方面是人们重点研究与应用的平台。本论文以兽疫链球菌和枯草芽孢杆菌为研究对象,应用多种策略对其HA寡糖代谢途径进行优化,实现了HA寡糖的高产。主要结论如下:(1)在Streptococcus zooepidemicus WSH-24中过表达nisA启动子控制下的HasA(透明质酸合酶),确定在80 g·L-1葡萄糖浓度下Nisin终浓度为40 ng·m L-1最佳。通过LHAase(水蛭来源的透明质酸酶)的N-端融合6个His标签和RBS序列优化策略,实现LHAase在兽疫链球菌中分泌表达,重组菌的LHAase的最大酶活达到11113.2 U·mL-1。通过同时过表达HasA和优化表达水蛭来源的LHAase,解决了发酵过程的溶氧问题并实现了HA寡糖的高效发酵合成。重组菌株摇瓶发酵24 h时HA寡糖积累至0.97 g·L-1,比野生菌提高了182.0%。3 L发酵罐中发酵24 h时HA寡糖积累至7.06 g·L-1,比野生菌的罐上水平提高了112.4%。(2)在Bacillus subtilis 168中优化HA寡糖代谢途径,通过启动子工程和表达同工酶策略,在枯草芽孢杆菌中共表达sz HasA(兽疫链球菌来源的透明质酸合酶)与pmHasA(多杀性巴氏杆菌来源的透明质酸合酶),摇瓶发酵24 h时HA产量达到0.49 g·L-1。通过基因组上整合过表达P43启动子调控的途径基因glmM(编码乙酰基转移酶)、glmS(编码果糖-6-磷酸酰胺转移酶)、glmU(编码焦磷酸化酶)、tuaD(编码UDP-葡萄糖脱氢酶),实现HA前体的强化。通过基因组上整合表达P43启动子调控的水蛭型透明质酸酶基因LHyal,实现了HA寡糖的高效合成。通过敲除自溶相关基因lytH(编码孢子形成特异性L-Ala-D-Glu内肽酶)、lytG(编码N-乙酰氨基葡萄糖苷酶)、lytD(编码N-乙酰氨基葡萄糖苷酶)、lytC(编码N-乙酰胞壁酰-L-丙氨酸酰胺酶),不仅提高重组菌生物量,而且有益于HA寡糖产量的提高。最终,摇瓶发酵24 h时HA寡糖产量达到1.54 g·L-1。(3)构建枯草芽孢杆菌转录后调控系统bsrE/sr5,并通过应用于调控绿色荧光蛋白GFP与分裂起始蛋白Fts Z,证明该系统具有良好的适用性与可靠性。将调控系统bsr E/sr5应用于降低HA旁路途径相关基因表达,使用内源Ⅳ类组成型较弱启动子PsigW调控sr5的表达量来下调旁路途径zwf(编码葡萄糖-6-磷酸脱氢酶)、pfkA(编码6-磷酸果糖激酶)、mnaA(编码UDP-N-乙酰甘露糖胺-2-差向异构酶)、mur AA(编码UDP-N-乙酰葡糖胺1-羧基乙烯基转移酶)、murAB(编码UDP-N-乙酰葡糖胺1-羧基乙烯基转移酶)基因的表达水平,实现了在保持细胞正常生理活动的同时提高HA寡糖产量,OD600基本维持在9左右,而HA寡糖产量大幅度提高,摇瓶发酵24 h时达到2.51 g·L-1。(4)通过在3 L发酵罐上进行分批补料发酵,实现了高效生物合成HA寡糖。枯草芽孢杆菌重组菌株BSha34分批补料发酵40 h时HA寡糖的产量达到12.6 g·L-1,生产强度为315.0 mg·(L·h)-1,所构建的重组菌在HA寡糖生产方面具有明显优势。
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