本研究主要以紫萼[Hosta ventricosa(Salisb.)Steam]的腋芽、叶片、花葶、花蕾、花梗、子房、花丝及花柱作为外植体材料,对紫萼组织培养进行系统地研究,并探讨了工厂化快速繁殖紫萼的技术,为玉簪属在其他方面的研究及实际生产中的应用提供技术支持。本文主要筛选最佳取材部位、最佳消毒方式及最佳取材时期,并通过不同的植物生长调节剂筛选外植体的初代培养、继代增殖培养、生根培养的最佳培养基,并筛选组培苗最佳移栽基质。通过对以上几个方面系统的研究分析,探讨能快速繁殖的最佳技术体系,并对工厂化生产进行了初步探讨。实验的主要结果如下：1.不同的外植体最佳消毒方式不同,腋芽最佳的消毒处理为：75%酒精消毒40s+0.1%HgCl2溶液处理5min+0.1%HgCl2溶液处理8min；叶片最佳的消毒处理为：75%酒精消毒30s+0.1%HgCl2溶液处理3min+0.1%HgCl2溶液处理2min；花葶最佳的消毒处理为：75%酒精消毒40s+0.1%HgCl2溶液处理5min+0.1%HgCl2溶液处理6min；花梗最佳的消毒处理为：75%酒精消毒30s+0.1%HgCl2溶液处理4min+0.1%HgCl2溶液处理5min子房和花蕾最佳的消毒处理为：75%酒精消毒30s+0.1%HgCl2溶液处理4min+0.1%HgCl2溶液处理3min；花柱和花丝最佳的消毒处理为：75%酒精消毒30s+0.1%HgCl2溶液处理3min。2.不同的外植体最佳取材时期不同：腋芽在4月、5月、12月,叶片在4月、5月,花器官在7月下旬之前。在最佳时期取材,外植体的污染率较低,成活率较高,启动率最高。3.最佳的取材部位是腋芽、花梗、花葶、子房、花蕾。这些外植体形成有效芽不经过愈伤组织阶段或者经过愈伤组织阶段很短,明显缩短了获得组培苗的时间,并减少发生变异的机率。4.不同的外植体诱导有效芽需要的最佳培养基不同：腋芽最佳诱导培养基是MS+6-BA2.5mg/L+NAA0.1mg/L,诱导率为99.0%；花梗最佳诱导培养基是：MS+6-BA2.0mg/L+KT-300.5mg/L+NAA0.2mg/L,诱导率为94.8%；花葶最佳诱导培养基是MS+6-BA2.0mg/L+KT-301.0mg/L+NAA0.2mg/L,诱导率为67.1%；子房最佳诱导培养基是：MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L,诱导率为66.3%；花蕾最佳诱导培养基为：MS+6-BA0.5mg/L+KT-300.5mg/L+NAA0.3mg/L,诱导率为57.3%。5.不同的外植体诱导的有效芽最佳增殖培养基不同：腋芽和花蕾有效芽最佳增殖培养基都是MS+6-BA2.5mg/L+NAA0.5mg/L,最高增殖系数分别是9.6和6.2；花梗和子房不定芽最佳增殖培养基是MS+6-BA2.5mg/L+NAA0.3mg/L,最高增殖系数分别是12.9和3.7；花葶不定芽最佳增殖培养基是MS+6-BA2.5mg/L+KT-301.0mg/L+NAA0.1mg/L,最高增殖系数达5.4；继代周期以30-35d增殖最佳,继代代数最好不超过7-8代。6.不同的生长素对组培苗的生根效果不同,其中ABT生根效果最好,生根率最高是100%,生根条数最多是16.3条,且根毛较多,根较粗。所以,组培苗最佳生根培养基是1/2MS+ABT0.3mg/L+蔗糖20g/L。7.组培苗经过炼苗后移栽到不同的基质中成活率差异明显,以纯沙基质成活率最差,最适的移栽基质是园土、草炭土、沙(1：1：2)混合,其苗成活率最高是92.6%。8.在进行工厂化生产组培苗时,为了降低生产成本,可以使用白砂糖代替蔗糖,但是最好不要直接用自来水代替蒸馏水,最好先把自来水简单处理一下。在使用光照时,可以用自然光代替部分灯光。