利用重组大肠杆菌生产l-丝氨酸的研究

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L-丝氨酸是一种常见的氨基酸,在生物体内参与蛋白质的合成,并可作为中间代谢产物,参与合成多种具有重要生理功能的物质,如半胱氨酸和甘氨酸等。L-丝氨酸是一种重要的工业产物,在食品、精细化工及医药方面有广泛应用。L-丝氨酸的合成方法主要有三种:直接提取、化学合成,以及生物合成。前两种方法的L-丝氨酸产率较高,但均会应用到一些对环境、生物体危害较大的化学试剂。随着人们对各种微生物代谢背景及生物学特性的愈发了解,利用微生物反应器,通过系统的调控微生物体内代谢,使其定向的大量合成某种代谢产物变得更加容易。然而,由目前的研究成果来看,生物法合成L-丝氨酸的转化率仍然较低。随着环境问题的日益突出,迫切需要我们建立一种具有较高转化率的L-丝氨酸微生物合成方法。   大肠杆菌是一种在生物学上常用的模式生物,具有生长速度快、培养方法简单等优点。由于人们对其遗传背景、培养条件已有了较全面的了解,并建立了完整的遗传操作方法,大肠杆菌常作为宿主菌用于各种工业产物的生物转化或微生物发酵,应用于大规模的工业生产中。在大肠杆菌中,糖酵解中的3-磷酸甘油酸在3-磷酸甘油酸脱氢酶、磷酸丝氨酸转氨酶及磷酸丝氨酸磷酸化酶催化下,经过三步反应生成L-丝氨酸。   L-丝氨酸作为大肠杆菌体内重要的中间代谢产物,需要向下合成许多其他物质,并通过转化为丙酮酸完成其降解。因此,虽然由葡萄糖转化成的L-丝氨酸量较多,但可以积累的L-丝氨酸量较少。目前,以大肠杆菌为目标菌株进行L-丝氨酸的生产有了一定的研究,但研究的较为基础,产量都不是很高。   质粒是代谢工程与合成生物学研究中常用的基因过表达载体。各种质粒由于其拷贝数、启动子强度的不同,可产生不同强度的基因表达水平。高拷贝质粒可产生更多的目的基因拷贝,在理论上得到的目的产物也较多,然而,质粒的维持需要利用菌体的核苷酸进行DNA的复制及目的基因的转录,在对菌体产生代谢负担的同时,往往还会对细胞内正常的代谢过程造成影响。高拷贝质粒无疑加重了这方面的顾虑,有时会有质粒不稳定,甚至丢失的情况发生。   我们在敲除了sdaA的大肠杆菌DH5α中,分别利用带有弱启动子的低拷贝质粒pBBR1MCS-2和带有强启动子的中高拷贝质粒pTrc99a过表达L-丝氨酸合成途径的三个基因,得到菌株Sp和SpTrc,两株菌经72h分批发酵,各产生了4.46g/L和6.36g/LL-丝氨酸,质粒的替换使L-丝氨酸途径进一步扩大,菌体代谢变旺盛,产生更多的乙酸用于供能。   乙醛酸循环是大肠杆菌中TCA循环的补给途径,在K12系列中受转录抑制蛋白Ic(1)R、ArcA抑制而关闭。敲除抑制蛋白可将乙醛酸循环打开,菌体代谢分布发生变化,L-丝氨酸积累增多。这对以葡萄糖为底物的高密度发酵L-丝氨酸有益,且在葡萄糖不足的情况下尤其明显。aceB编码乙醛酸生成苹果酸的苹果酸合酶,位于aceBAK操纵子的首位,此基因的缺失会造成乙醛酸的积累,引起菌体代谢分布的进一步变化。在菌株SpTrc中依次敲除iclR、arcA,开启了乙醛酸循环,并通过敲除aceB提高了乙醛酸水平,得到菌株3SpTrc。乙醛酸循环打开后,菌体供能充足,碳源浪费减少,生长代谢变旺盛,配合乙醛酸水平的升高,使产物积累增多到8.34g/L。   质粒具有不稳定的缺点,并会因为多种问题导致底物浪费的现象出现。使用特定方法将目的基因整合到宿主菌基因组,可实现目的基因的稳定表达,同时实现对基因表达量的精确控制,避免了质粒表达可能带来的问题。利用FLP/FRT位点专一性重组,构建L-丝氨酸操纵子,整合上三个拷贝的菌株产L-丝氨酸2.3g/L。继而将基因serAs和serC分别成环,同时整合到有多个FRT位点的L-丝氨酸合成菌株中,两基因拷贝数的增多使同一途径的serB表达量上调至少两倍,当serAs拷贝数为10,serC拷贝数为6,同时serB表达量提高4倍时,L-丝氨酸产量最高,24h摇瓶发酵为4.45g/L。这说明只有serAs和serC的表达量较大且比例协调时,L-丝氨酸通路才能最大程度的打开,积累最多的产物。利用FLP/FRT位点专一性重组法在基因组上整合较少拷贝数的基因,即可达到与较高水平质粒表达的效果,得到具有应用优势的工业菌株。
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