【摘 要】
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目的探讨体外获取培养、鉴定和标记的人脐带间充质干细胞(HU-MSCs)对阿霉素(ADR)诱导的局灶性节段性肾小球硬化(FSGS)小鼠肾脏的保护作用,以及相关机制的研究。方法(1)无菌条件下取人脐带,采用酶解法获得HU-MSCs,对获得的原代干细胞进行筛选、传代培养,观察细胞形态;流式细胞术检测HU-MSCs细胞表面抗原;进行细胞冻存备用;复苏后PKH-26标记示踪。(2)36只8周龄雄性Balb/
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目的探讨体外获取培养、鉴定和标记的人脐带间充质干细胞(HU-MSCs)对阿霉素(ADR)诱导的局灶性节段性肾小球硬化(FSGS)小鼠肾脏的保护作用,以及相关机制的研究。方法(1)无菌条件下取人脐带,采用酶解法获得HU-MSCs,对获得的原代干细胞进行筛选、传代培养,观察细胞形态;流式细胞术检测HU-MSCs细胞表面抗原;进行细胞冻存备用;复苏后PKH-26标记示踪。(2)36只8周龄雄性Balb/c小鼠在适应性喂养一周后,随机分成2组:实验组(n=24),以10.5mg/kg体重一次性尾静脉注射盐酸阿霉素;对照组(n=12),同样方法注射等量的0.9%无菌生理盐水。于7、14、28天分别测量体重和接收尿液,观察小鼠体重变化及检测小鼠尿白蛋白含量;造模28天全部小鼠进行眼眶取血,检测血清肌酐、尿素氮;两组杀鼠各6只取肾脏组织进行光镜观察,判断模型制备是否成功。(3)造模成功后将实验组FSGS模型小鼠18只,随机分为FSGS模型组(FSGS,n=6)、干细胞治疗组(FSGS+HU-MSCs,n=6)、生理盐水治疗组(FSGS+NS,n=6)、将6只正常小鼠作为对照组(Control)。FSGS+HU-MSCs组予实验第33,40,47,54,61天分别一次尾静脉注射HU-MSCs(2*10~6),FSGS+NS组、Control组分别在相同时间注射等量的0.9%无菌生理盐水作为对照。每组于实验第54、68天分别测量体重和收集24h尿,再次观察小鼠体重变化及检测小鼠尿白蛋白含量。在实验的第68天处死所有小鼠,收集血液和肾脏样本,检测血清肌酐和尿素氮,通过HE、PAS和Masson染色观察肾组织病理情况,应用免疫荧光半定量法检测TGF-β1、Smad3、Smad7蛋白表达。结果(1)HU-MSCs的培养、鉴定结果:经胶原酶消化法分离培养的细胞于24-48小时后开始贴壁,3-5天贴壁细胞以梭形为主,经过10-14天的培养后融合率可达80-90%。流式细胞仪鉴定结果显示HU-MSCs特异性表达上皮细胞表面抗原如CD29、CD44、CD90、CD105、CD126,而不表达造血细胞、内皮细胞表面标志如CD34、CD45和CD31,不表达主要组织相容性抗原HLA-DR。(2)阿霉素诱导FSGS模型小鼠结果显示:实验组小鼠体重明显低于对照组(P<0.01),尿白蛋白、血清肌酐、尿素氮水平明显高于对照组(P<0.05);28天肾脏病理示肾小球系膜细胞和系膜基质轻度增生,节段中度加重,部分可见毛细血管袢受压狭窄、球囊粘连伴足细胞增生,肾小管上皮细胞肿胀变性,可见管型,肾间质可见淋巴细胞浸润,小血管管壁增厚。(3)HU-MSCs移植治疗后结果示:FSGS+HU-MSCs组、FSGS组、FSGS+NS组与Control组相比体重显著降低(p<0.001),尿白蛋白、血肌酐、尿素氮水平均显著增加(p<0.001);其中FSGS+HU-MSCs组较FSGS组和FSGS+NS组体重显著增加(P<0.05),尿白蛋白、血肌酐、尿素氮水平均显著降低(P<0.01);实验第68天(即干细胞治疗后第35天)FSGS+HU-MSCs组肾脏病理显示肾小球系膜细胞、系膜基质轻度增生,肾小管管型消失,空泡变性显著减轻,肾间质淋巴细胞浸润及纤维化减轻,未见充血出血;免疫组化结果显示FSGS组和FSGS+HU-MSCs组较Control组TGF-β1、Smad3表达明显增加(P<0.001),Smad7表达明显减低(P<0.001);而FSGS+HU-MSCs组与FSGS组相比TGF-β1和Smad3表达显著减弱,Smad7蛋白水平显著增加,差异性均为P<0.001。结论HU-MSCs可能通过TGF-β1/Smad信号通路修复FSGS小鼠肾脏纤维化损伤进而减缓疾病的进展。
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