论文部分内容阅读
摘要[目的]建立一种同时测定光枝勾儿茶中芦丁和槲皮素的含量的方法。[方法]采用HPLC法对光枝勾儿茶内的芦丁和槲皮素进行测定,色谱柱为ZORBAX SB-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm),流动相为乙腈-0.1 %磷酸水溶液,检测波长360 nm,流速1.0 mL/min,柱温25 ℃;进样量10 μL。[结果]芦丁和槲皮素分别在0.109~1.090和0.104~1.040 μg范围内与峰面积呈良好的线性关系。芦丁平均回收率为98.84%,RSD为2.34%;槲皮素平均回收率为99.65%,RSD为2.51%。[结论]该方法简便、准确、精密度高、重复性好,可用于该药材的质量检测。
关键词光枝勾儿茶;芦丁;槲皮素;HPLC法;含量
中图分类号R284文献标识码 A文章编号 0517-6611(2016)13-164-03
目前,市场上治疗猪、牛、羊腹泻的主要药物是抗生素类,抗生素使用后在动物体内存在残留和抗药性问题,食用后影响人体健康。中兽药能有效避免药物残留和抗药性的问题,成为目前研究的热点[1],如止痢散,其主要成分是光枝勾儿茶[2]。光枝勾儿茶(Berchemia polyphylla Wall.ex.Lawson)是鼠李科勾儿茶属的一个变种,具有清热利湿、止咳等功效[3],同时可治疗猪、牛、羊的腹泻[4-8]。
中兽药进入市场前需对药物的质量标准进行检测,为此需对止痢散药效进行检测。研究发现,止痢散主要药效源于光之勾儿茶内的黄酮类化合物芦丁和槲皮素[9],测定芦丁和槲皮素的主要方法有分光光度法和HPLC法[10-11]。检测光枝勾儿茶中芦丁和槲皮素报道较少且一般均分开检测这2种物质[12-13],忽略了两者在一起的药效作用,对评价光之勾儿茶内芦丁和槲皮素的联合药效不够精确,该研究采用HPLC法同时测定光枝勾儿茶内芦丁和槲皮素的含量,以期为评价光枝勾儿茶药效提供依据。
1材料与方法
1.1仪器Agilent 1263LC色谱仪(美国Agilent公司);SB2200型超声波清洗机(上海卓越仪器有限公司);AE200电子天平(中国梅特勒托利多公司);优普超纯水机(成都优普仪器有限公司);电热鼓风干燥箱(天津泰斯特仪器公司);98-1-B型电子调温电热套(天津市泰斯特仪器有限公司);SHB-循环水式多真空泵(郑州长城科工贸有限公司);旋转蒸发器RE-3000(上海亚荣生化仪器厂)。
1.2试料光枝勾儿茶采自贵州省贵阳修文、安顺镇宁、兴义贞丰、安顺关岭、安顺紫云、广西桂林、四川成都、黔东南丹寨、毕节纳雍、铜仁德江等不同地区,每个地区均采集根、藤、叶。芦丁对照品购于中国药品生物制品检定所,批号10080-200707,含量90.5%;槲皮素对照品购于中国生物制品检定所,批号10081-200406,含量97.3%。乙腈为色谱纯;其他试剂为分析纯;水为去离子水。
1.3方法
1.3.1溶液的配置。
1.3.1.1对照品溶液的制备。精密称取真空干燥芦丁对照品10.9 mg,用甲醇使其充分溶解,定容至10 mL,得质量浓度为0.109 mg/mL,备用。精密称取真空干燥槲皮素对照品10.4 mg,用甲醇使其充分溶解,并定容至10 mL,得质量浓度为0.104 mg/mL,备用。
1.3.1.2供试品溶液的制备。准确称取光枝勾儿茶粉末10.00 mg,用100 mL甲醇回流提取3次,每次提取1 h,过滤,合并滤液,滤液挥发干燥,用甲醇定容至100 mL,再用0.45 μm滤膜过滤,滤液作为供试品备用。
1.3.2方法学考察。
1.3.2.1色谱条件及系统适应性试验。色谱柱为Agilent ZORBAX SB-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流动相为乙腈-磷酸水溶液,流速1.0 mL/min,柱温28 ℃,进样量10 μL,检测波长360 nm。在选定条件下,芦丁、槲皮素色谱峰与其他杂质峰达到基线分离,分离度(R)>1.5,芦丁、槲皮素踏板数>3 000。
1.3.2.2标准曲线的绘制。
(1)芦丁标准曲线的绘制。精密吸取质量浓度为0.109 mg/mL的芦丁对照品供试液1、2、4、6、8、10 μL进样,按照“1.3.2.1”色谱条件进行测定,以峰面积(Y)为纵坐标、质量浓度(X)为横坐标绘制标准曲线,计算线性回归方程。
(2)槲皮素标准曲线的绘制。精密吸取质量浓度为0104 mg/mL的槲皮素对照品供试液1、2、4、6、8、10 μL进样,按照“1.3.2.1”色谱条件进行测定,以峰面积(Y)为纵坐标、质量浓度(X)为横坐标绘制标准曲线,计算线性回归方程。
1.3.2.3精密度试验。取对照品溶液10 μL,分别连续进样5次,每次10 μL,以峰面积计算精密度,要求RSD<3%。
1.3.2.4重复性试验。精密称取光枝勾儿茶药材6份样品,按“1.3.1.2”方法操作,每份进样5次,每次10 μL,要求芦丁、槲皮素的RSD<3%。
1.3.2.5稳定性试验。取对照品、供试品各1份,室温下分别放置0、2、4、12、24、48 h后,测定峰面积。
1.3.2.6加样回收率试验。根据线性范围设计芦丁和槲皮素含量高、中、低3种水平,精密吸取已测知芦丁和槲皮素含量的光枝勾儿茶药材适量,每个水平3份,再分别按要求精密加入一定量的对照品,按“1.3.1.2”方法操作,用HPLC方法测定,计算回收率。
1.3.3样品中芦丁、槲皮素含量的测定。过0.45 μm滤膜后,按照“1.3.2.1”色谱条件和“1.3.1.2”供试品溶液配制方法测定芦丁和槲皮素的含量。
2结果与分析 2.1方法学考察
2.1.1系统适应性试验。由图1可见,在6.105 min,芦丁对照品出现最大吸收峰,主峰尖锐且无杂峰;槲皮素对照品在19.375 min出现最大吸收峰,主峰尖锐无杂峰。样品中芦丁和槲皮素的最大吸收峰主峰尖锐无杂峰,最大吸收峰出现的时间分别在6.069和19.206 min,与对照品最大吸收峰时间十分接近。
2.1.2标准曲线的绘制。按照“1.3.2.1”方法操作,得到芦丁和槲皮素的回归曲线分别为Y=269.9X+9.689 9(r=0999 5)、Y=818.71X(r=0.999 9),表明芦丁和槲皮素的浓度分别在0.109~1.090、0.104~1.040 μg范围内与峰面积线性关系良好。
2.1.3精密度试验。按照“1.3.2.3”方法操作,得到芦丁和槲皮素RSD分别为0.32%、0.29%(n=5),表明操作过程中仪器精密度良好。
2.1.4重复性试验。按照“1.3.2.4”方法操作,得到芦丁、槲皮素RSD分别为2.48%、2.94%,表明方法具有较好的重复性。
2.1.5稳定性试验。按照“1.3.2.5”方法,得到芦丁和槲皮素的峰面积RSD分别为1.86%、287%,表明样品供试液在48 h内稳定。
2.1.6加样回收率试验。由表1可见,芦丁平均回收率为98.84%,RSD值为2.34%,槲皮素平均回收率为99.65%,RSD值为2.51%,表明加样回收率均符合要求。
2.2样品中芦丁、槲皮素含量的测定分别对采集于我国不同地区的10个光之勾儿茶样品内的芦丁和槲皮素进行同时测定,结果发现(表2),黔东南丹寨的光之勾儿茶内芦丁、槲皮素含量最高。
3讨论与结论
该试验在制备供试品溶液时分别采用50%、95%的乙醇、无水乙醇、甲醇作为溶剂,经过HPLC试验分析,得出甲醇溶解所得的供试品峰形、分离度均好。因此,选取甲醇为提取液。预试验分别采用甲醇-水、甲醇-0.1%磷酸、乙腈- 水、乙腈-0.1%磷酸为流动相系统,通过出峰数目、峰面积、分离度等的对比,选择最优的流动相为乙腈-0.1%磷酸,在此流动相系统时出峰的数目多,分离效果好,漂移现象弱,峰形好。在预试验过程中分别选用280、354、360 nm,其中芦丁最大吸收波长分别为280、360 nm,槲皮素吸收最大波长分别为254、360 nm,兼顾芦丁、槲皮素检测灵敏度,确定最佳检测波长为360 nm。芦丁和槲皮素在360 nm处有最大的紫外吸收值。
该研究采用HPLC法同时测定光枝勾儿茶内芦丁和槲皮素的含量,结果发现,芦丁和槲皮素分别在0.109~1.090和0.104~1.040 μg范围内与峰面积呈良好的线性关系;芦丁平均回收率为98.84%,RSD为2.34%;槲皮素平均回收率为99.65%,RSD为2.51%。该方法简便、准确、精密度高、重复性好,可用于该药材的质量检测,为光枝勾儿茶质量标准提供重要的方法依据。
参考文献
[1]滕红丽,陈科力,陈士林.壮药铁包金及其药材商品的物种基础[J].中药材,2010(5):675-677.
[2] 广西药用植物园.广西药用植物园药用植物名录[Z].2006:139-141.
[3] 湖北省中药资源普查办公室.中药资源名录[M].北京:科学出版社,1990:212.
[4] 陈德明.消炎止痢散[J].河南农业科学,1976(3):37.
[5] 措毛加.特效止痢散在仔猪腹泻预防中的应用[J].中国畜牧兽医文摘,2015(1):204.
[6] 路卫星.中药止痢散防治仔猪腹泻病的试验[J].黑龙江畜牧兽医,2015(6):111-112.
[7] 孟庆大.药典方剂止痢散的药效与毒理学研究[D].长春:吉林大学,2010.
[8] 杨娟,潘琪,魏东法,等.光枝勾儿茶化学成分研究(II)[J].中国药学杂志,2006(4):255-257.
[9] 杨娟,段文峰,彭英,等.光枝勾儿茶化学成分研究(Ⅰ)[J].中草药,2006(6):836-837.
[10] 吴玉强,邓家刚,钟正,等.铁包金提取物镇痛作用的研究[J].时珍国医国药,2008,19(4):854-855.
[11] 金越,吕勇,韩国柱,等.槲皮素及异槲皮素、芦丁抗自由基活性的比较研究[J].中草药,2007(3):408-4011.
[12] 尚永辉,李华,孙家娟,等.偏最小二乘-分光光度法同时测定芦丁与槲皮素的方法研究[J].分析测试学报,2011(4):457-460.
[13] 滕红丽,郭力城,李鑫.光枝勾儿茶高效液相色谱指纹图谱研究[J].时珍国医国药,2011(5):1233-1235.
关键词光枝勾儿茶;芦丁;槲皮素;HPLC法;含量
中图分类号R284文献标识码 A文章编号 0517-6611(2016)13-164-03
目前,市场上治疗猪、牛、羊腹泻的主要药物是抗生素类,抗生素使用后在动物体内存在残留和抗药性问题,食用后影响人体健康。中兽药能有效避免药物残留和抗药性的问题,成为目前研究的热点[1],如止痢散,其主要成分是光枝勾儿茶[2]。光枝勾儿茶(Berchemia polyphylla Wall.ex.Lawson)是鼠李科勾儿茶属的一个变种,具有清热利湿、止咳等功效[3],同时可治疗猪、牛、羊的腹泻[4-8]。
中兽药进入市场前需对药物的质量标准进行检测,为此需对止痢散药效进行检测。研究发现,止痢散主要药效源于光之勾儿茶内的黄酮类化合物芦丁和槲皮素[9],测定芦丁和槲皮素的主要方法有分光光度法和HPLC法[10-11]。检测光枝勾儿茶中芦丁和槲皮素报道较少且一般均分开检测这2种物质[12-13],忽略了两者在一起的药效作用,对评价光之勾儿茶内芦丁和槲皮素的联合药效不够精确,该研究采用HPLC法同时测定光枝勾儿茶内芦丁和槲皮素的含量,以期为评价光枝勾儿茶药效提供依据。
1材料与方法
1.1仪器Agilent 1263LC色谱仪(美国Agilent公司);SB2200型超声波清洗机(上海卓越仪器有限公司);AE200电子天平(中国梅特勒托利多公司);优普超纯水机(成都优普仪器有限公司);电热鼓风干燥箱(天津泰斯特仪器公司);98-1-B型电子调温电热套(天津市泰斯特仪器有限公司);SHB-循环水式多真空泵(郑州长城科工贸有限公司);旋转蒸发器RE-3000(上海亚荣生化仪器厂)。
1.2试料光枝勾儿茶采自贵州省贵阳修文、安顺镇宁、兴义贞丰、安顺关岭、安顺紫云、广西桂林、四川成都、黔东南丹寨、毕节纳雍、铜仁德江等不同地区,每个地区均采集根、藤、叶。芦丁对照品购于中国药品生物制品检定所,批号10080-200707,含量90.5%;槲皮素对照品购于中国生物制品检定所,批号10081-200406,含量97.3%。乙腈为色谱纯;其他试剂为分析纯;水为去离子水。
1.3方法
1.3.1溶液的配置。
1.3.1.1对照品溶液的制备。精密称取真空干燥芦丁对照品10.9 mg,用甲醇使其充分溶解,定容至10 mL,得质量浓度为0.109 mg/mL,备用。精密称取真空干燥槲皮素对照品10.4 mg,用甲醇使其充分溶解,并定容至10 mL,得质量浓度为0.104 mg/mL,备用。
1.3.1.2供试品溶液的制备。准确称取光枝勾儿茶粉末10.00 mg,用100 mL甲醇回流提取3次,每次提取1 h,过滤,合并滤液,滤液挥发干燥,用甲醇定容至100 mL,再用0.45 μm滤膜过滤,滤液作为供试品备用。
1.3.2方法学考察。
1.3.2.1色谱条件及系统适应性试验。色谱柱为Agilent ZORBAX SB-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流动相为乙腈-磷酸水溶液,流速1.0 mL/min,柱温28 ℃,进样量10 μL,检测波长360 nm。在选定条件下,芦丁、槲皮素色谱峰与其他杂质峰达到基线分离,分离度(R)>1.5,芦丁、槲皮素踏板数>3 000。
1.3.2.2标准曲线的绘制。
(1)芦丁标准曲线的绘制。精密吸取质量浓度为0.109 mg/mL的芦丁对照品供试液1、2、4、6、8、10 μL进样,按照“1.3.2.1”色谱条件进行测定,以峰面积(Y)为纵坐标、质量浓度(X)为横坐标绘制标准曲线,计算线性回归方程。
(2)槲皮素标准曲线的绘制。精密吸取质量浓度为0104 mg/mL的槲皮素对照品供试液1、2、4、6、8、10 μL进样,按照“1.3.2.1”色谱条件进行测定,以峰面积(Y)为纵坐标、质量浓度(X)为横坐标绘制标准曲线,计算线性回归方程。
1.3.2.3精密度试验。取对照品溶液10 μL,分别连续进样5次,每次10 μL,以峰面积计算精密度,要求RSD<3%。
1.3.2.4重复性试验。精密称取光枝勾儿茶药材6份样品,按“1.3.1.2”方法操作,每份进样5次,每次10 μL,要求芦丁、槲皮素的RSD<3%。
1.3.2.5稳定性试验。取对照品、供试品各1份,室温下分别放置0、2、4、12、24、48 h后,测定峰面积。
1.3.2.6加样回收率试验。根据线性范围设计芦丁和槲皮素含量高、中、低3种水平,精密吸取已测知芦丁和槲皮素含量的光枝勾儿茶药材适量,每个水平3份,再分别按要求精密加入一定量的对照品,按“1.3.1.2”方法操作,用HPLC方法测定,计算回收率。
1.3.3样品中芦丁、槲皮素含量的测定。过0.45 μm滤膜后,按照“1.3.2.1”色谱条件和“1.3.1.2”供试品溶液配制方法测定芦丁和槲皮素的含量。
2结果与分析 2.1方法学考察
2.1.1系统适应性试验。由图1可见,在6.105 min,芦丁对照品出现最大吸收峰,主峰尖锐且无杂峰;槲皮素对照品在19.375 min出现最大吸收峰,主峰尖锐无杂峰。样品中芦丁和槲皮素的最大吸收峰主峰尖锐无杂峰,最大吸收峰出现的时间分别在6.069和19.206 min,与对照品最大吸收峰时间十分接近。
2.1.2标准曲线的绘制。按照“1.3.2.1”方法操作,得到芦丁和槲皮素的回归曲线分别为Y=269.9X+9.689 9(r=0999 5)、Y=818.71X(r=0.999 9),表明芦丁和槲皮素的浓度分别在0.109~1.090、0.104~1.040 μg范围内与峰面积线性关系良好。
2.1.3精密度试验。按照“1.3.2.3”方法操作,得到芦丁和槲皮素RSD分别为0.32%、0.29%(n=5),表明操作过程中仪器精密度良好。
2.1.4重复性试验。按照“1.3.2.4”方法操作,得到芦丁、槲皮素RSD分别为2.48%、2.94%,表明方法具有较好的重复性。
2.1.5稳定性试验。按照“1.3.2.5”方法,得到芦丁和槲皮素的峰面积RSD分别为1.86%、287%,表明样品供试液在48 h内稳定。
2.1.6加样回收率试验。由表1可见,芦丁平均回收率为98.84%,RSD值为2.34%,槲皮素平均回收率为99.65%,RSD值为2.51%,表明加样回收率均符合要求。
2.2样品中芦丁、槲皮素含量的测定分别对采集于我国不同地区的10个光之勾儿茶样品内的芦丁和槲皮素进行同时测定,结果发现(表2),黔东南丹寨的光之勾儿茶内芦丁、槲皮素含量最高。
3讨论与结论
该试验在制备供试品溶液时分别采用50%、95%的乙醇、无水乙醇、甲醇作为溶剂,经过HPLC试验分析,得出甲醇溶解所得的供试品峰形、分离度均好。因此,选取甲醇为提取液。预试验分别采用甲醇-水、甲醇-0.1%磷酸、乙腈- 水、乙腈-0.1%磷酸为流动相系统,通过出峰数目、峰面积、分离度等的对比,选择最优的流动相为乙腈-0.1%磷酸,在此流动相系统时出峰的数目多,分离效果好,漂移现象弱,峰形好。在预试验过程中分别选用280、354、360 nm,其中芦丁最大吸收波长分别为280、360 nm,槲皮素吸收最大波长分别为254、360 nm,兼顾芦丁、槲皮素检测灵敏度,确定最佳检测波长为360 nm。芦丁和槲皮素在360 nm处有最大的紫外吸收值。
该研究采用HPLC法同时测定光枝勾儿茶内芦丁和槲皮素的含量,结果发现,芦丁和槲皮素分别在0.109~1.090和0.104~1.040 μg范围内与峰面积呈良好的线性关系;芦丁平均回收率为98.84%,RSD为2.34%;槲皮素平均回收率为99.65%,RSD为2.51%。该方法简便、准确、精密度高、重复性好,可用于该药材的质量检测,为光枝勾儿茶质量标准提供重要的方法依据。
参考文献
[1]滕红丽,陈科力,陈士林.壮药铁包金及其药材商品的物种基础[J].中药材,2010(5):675-677.
[2] 广西药用植物园.广西药用植物园药用植物名录[Z].2006:139-141.
[3] 湖北省中药资源普查办公室.中药资源名录[M].北京:科学出版社,1990:212.
[4] 陈德明.消炎止痢散[J].河南农业科学,1976(3):37.
[5] 措毛加.特效止痢散在仔猪腹泻预防中的应用[J].中国畜牧兽医文摘,2015(1):204.
[6] 路卫星.中药止痢散防治仔猪腹泻病的试验[J].黑龙江畜牧兽医,2015(6):111-112.
[7] 孟庆大.药典方剂止痢散的药效与毒理学研究[D].长春:吉林大学,2010.
[8] 杨娟,潘琪,魏东法,等.光枝勾儿茶化学成分研究(II)[J].中国药学杂志,2006(4):255-257.
[9] 杨娟,段文峰,彭英,等.光枝勾儿茶化学成分研究(Ⅰ)[J].中草药,2006(6):836-837.
[10] 吴玉强,邓家刚,钟正,等.铁包金提取物镇痛作用的研究[J].时珍国医国药,2008,19(4):854-855.
[11] 金越,吕勇,韩国柱,等.槲皮素及异槲皮素、芦丁抗自由基活性的比较研究[J].中草药,2007(3):408-4011.
[12] 尚永辉,李华,孙家娟,等.偏最小二乘-分光光度法同时测定芦丁与槲皮素的方法研究[J].分析测试学报,2011(4):457-460.
[13] 滕红丽,郭力城,李鑫.光枝勾儿茶高效液相色谱指纹图谱研究[J].时珍国医国药,2011(5):1233-1235.