论文部分内容阅读
目的 探讨青霉素酶免疫血清在治疗产青霉素酶葡萄球菌感染中的作用.方法 采用青霉素酶加弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂充分乳化后,于新西兰兔背部皮下多点注射,制备青霉素酶免疫血清.以肉汤培养管中加入产青霉素酶的金黄色葡萄球菌、青霉素酶免疫血清和青霉素为实验组,同时设立肉汤培养管中加入产青霉素酶的金黄色葡萄球菌和青霉素酶免疫血清的实验对照组、仅有营养肉汤的实验空白组和肉汤培养管中加入青霉素和产青霉素酶的金黄色葡萄球菌的空白组,进行体外实验,观察培养基有无细菌生长,并采用Phoenix100细菌鉴定仪鉴定所生长细菌是否为金黄色葡萄球菌.同时制备新西兰兔产青霉素酶金黄色葡萄球菌感染模型,分为实验组(经耳静脉注射青霉素酶免疫血清和青霉素)、空白对照组(仅经耳静脉注射青霉素)、实验对照组(仅经耳静脉注射青霉素酶免疫血清),连续观察各组新西兰兔体温、血培养变化.结果 体外培养72 h后,实验组、实验空白组无细菌生长;空白组和实验对照组有金黄色葡萄球菌生长.体内注射后第2、3、4、5、6天,实验组新西兰兔体温升高者均少于实验对照组(ｘ2=5.051、5.051、5.051、7.500、7.540,P＜0.05)和空白对照组(ｘ2=7.200、5.058、7.200、5.495、7.540,P＜0.05);第7天,实验组新西兰兔与实验对照组和空白对照组比较,体温增高者差异无统计学意义(ｘ2=3.058、3.529,P＞0.05).第1、2、3、4、5、6、7天,实验对照组新西兰兔与空白对照组比较体温增高者差异无统计学意义(x2 =0.000、0.267、0.000、0.267、0.220、0.059、0.024,P＞0.05).接种后第2天,实验组新西兰兔血培养阳性者与实验对照组比较差异无统计学意义(x2 =3.333,P＞0.05),但显著低于空白对照组(ｘ2 =5.051,P＜0.05);实验对照组新西兰兔血培养阳性者与空白对照组比较差异无统计学意义(x2 =0.220,P＞0.05).接种后第4天,实验组新西兰兔血培养阳性者显著低于实验对照组和空白对照组(ｘ2=7.500、7.500,P＜0.05),实验对照组新西兰兔血培养阳性者与空白对照组比较差异无统计学意义(ｘ2=0.000,P＞0.05).接种后第6天,实验组新西兰兔血培养阳性者显著低于实验对照组和空白对照组(x2=7.540、5.000,P＜0.05);实验对照组与空白对照组比较差异无统计学意义(ｘ2=0.460,P＞0.05).结论 青霉素酶免疫血清可以消除金黄色葡萄球菌因产青霉素酶而产生的对青霉素类抗生素的耐药作用.