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乳腺癌是女性最常见的癌症,也是女性癌症死亡的主要原因。目前药物治疗存在耐药性,转移、晚期、难治性乳腺癌仍缺乏有效治疗手段。肿瘤相关的基因治疗发展迅速,其中,腺病毒(Adenovirus,Ad)载体是肿瘤基因治疗最常用的载体之一,主要分为条件复制型腺病毒和复制缺陷型腺病毒。溶瘤腺病毒属于条件复制型腺病毒,可以在肿瘤细胞中选择性复制并溶解肿瘤细胞,不影响正常细胞。但肿瘤微环境中存在抑制性免疫细胞,可抵消溶瘤病毒裂解肿瘤细胞后产生的免疫效应,抑制溶瘤腺病毒发挥作用。使用溶瘤腺病毒搭载免疫基因,可以激活机体免疫系统,增强溶瘤腺病毒的抗肿瘤作用。LIGHT是肿瘤坏死因子配体家族成员,在T细胞稳态和增殖中发挥关键作用,可选择性地诱导某些肿瘤细胞如同时表达淋巴毒素β受体(LTβR)和TR2/HVEM受体的肿瘤细胞凋亡,如231细胞,HT-29细胞,TIL1200。目前,LIGHT基因对乳腺癌的作用尚未有研究。因此,本研究的目的是评价溶瘤腺病毒rAd.Light对乳腺癌的治疗效果并初步阐明其作用机制。
首先我们需要获得rAd.light、rAd.Null、Ad.light和Ad.Null四种病毒。实验室前期已经构建了rAd.light、rAd.Null、Ad.light和Ad.Null四种重组腺病毒,并且已制备rAd.Null和Ad.Null两种对照病毒。在此基础上,我们对rAd.light和Ad.light病毒进行了扩增,并利用氯化铯密度梯度法进行纯化。采用分光光度法测定病毒颗粒滴度(virus particle,vp),rAd.light为1.2×1013vps/mL,rAd.Null为1.3×1012vps/mL,Ad.light为1.4×1013vps/mL,Ad.Null为1.4×1012vps/mL。通过半数组织培养物感染剂量法(TCID50)测定病毒感染滴度(每毫升感染单位(IU)),rAd.light为1.8×109IU/mL,rAd.Null为8×109IU/mL,Ad.light为2.5×109IU/mL,Ad.Null为8×109IU/mL。上述结果表明,我们已经成功获得了纯度与滴度均满足后续实验的病毒。
其次,我们检测了Light对乳腺癌细胞增殖和凋亡影响。小鼠乳腺癌细胞系4T1细胞分别感染Ad.Light和rAd.Light,感染48h后采用流式细胞术检测LIGHT蛋白的表达情况,检测结果表明,两种病毒均可很好地介导4T1细胞表达LIGHT。4T1细胞分别感染Ad.Light和Ad.Null,感染48h后利用CCK8法检测LIGHT对4T1细胞增殖的影响。结果表明,与Ad.Null组相比,Ad.Light组4T1细胞存活率降低,表明LIGHT可以抑制4T1细胞的增殖。用不同颗粒滴度的Ad.Light和Ad.Null感染4T1细胞,感染48h后,流式细胞术检测细胞凋亡情况。结果表明,与对照Ad.Null组相比,Ad.Light组细胞凋亡比例更高,且随着病毒颗粒滴度的增加,细胞凋亡比例增加。因此,我们推测LIGHT可能通过抑制肿瘤生长,同时促进细胞凋亡发挥抗肿瘤作用。
然后,对rAd.Light治疗乳腺癌移植瘤的疗效进行评价。我们使用小鼠乳腺癌4T1细胞,小鼠背部皮下注射的方法建立小鼠乳腺癌移植瘤模型,注射剂量为1×106细胞/只小鼠。荷瘤后第7天对小鼠进行随机分组,分为buffer对照组,rAd.Null和rAd.Light两个治疗组。在荷瘤后第7和10天分别进行肿瘤瘤内给药,治疗组病毒给药剂量为2.5×1010vps/次/只小鼠,buffer组注射200μL的PBS。荷瘤后第7、14、18、21、25天记录肿瘤体积变化。荷瘤后第25天处死小鼠,取肿瘤组织,测量瘤重;HE染色进行组织病理学分析。结果表明,溶瘤腺病毒rAd.Null或rAd.Light均可抑制4T1移植瘤模型中肿瘤的生长,与rAd.Null组相比,rAd.Light对肿瘤生长的抑制作用更强。HE染色后可观察到溶瘤腺病毒治疗组肿瘤坏死面积增大,且rAd.Light组效果更明显。上述结果表明rAd.Light可促进肿瘤细胞坏死,抑制肿瘤生长。
最后,对rAd.Light治疗乳腺癌移植瘤的机制进行初步研究。荷瘤后第15和19天取外周血检测T淋巴细胞表型改变。荷瘤后第25天处死小鼠,取肿瘤组织,免疫组化检测CD3和Caspase-3的表达(包括CD3、CD4、CD8、Treg、Tmemory);提取RNA,通过实时定量PCR法检测LIGHT受体(包括LTβR和HVEM)、Th1型细胞因子(包括IL-2、IFN-γ和TNF-α)和Th2型细胞因子(包括TGF-β和IL-10)的表达情况。肿瘤组织免疫组化分析结果显示,治疗组CD3+T细胞浸润比例增加,caspase3阳性凋亡细胞比例增加,且rAd.Light组比例更高。实时定量PCR结果显示,溶瘤腺病毒治疗后LIGHT受体LTβR和HVEM表达均升高,且rAd.Light组比rAd.Null组升高更明显,二者之间的差异具有统计学意义。Th1型细胞因子表达上调,Th2型细胞因子表达下调,且与rAd.Null组相比,rAd.Light组调节作用更强。流式细胞术检测小鼠外周血T淋巴细胞,可看到溶瘤病毒治疗后CD4+T淋巴细胞比例下调,CD8+T淋巴细胞比例上调。且与rAd.Null组相比,rAd.Light组出现时间更早,作用更强。rAd.Light治疗后CD4+CD25+Foxp3+Treg细胞的比例降低。此外,我们还发现溶瘤腺病毒治疗后CD62LHighCD44+记忆T细胞百分比上调,且rAd.Light组发挥作用时间更早,效果更强。上述结果表明,rAd.Light通过促进肿瘤局部CD3+细胞浸润,肿瘤细胞凋亡,LIGHT及受体表达,调节Th1/Th2细胞因子平衡,从而调节肿瘤局部微环境;通过增加CD8+T淋巴细胞比例、促进CD4+T记忆细胞、减少调节性T细胞,从而增强机体抗肿瘤免疫反应。
综上所述,LIGHT和溶瘤腺病毒均可诱导乳腺癌细胞的凋亡和死亡。在小鼠乳腺癌皮下移植瘤模型中,rAd.Light通过诱导肿瘤细胞凋亡和死亡,引起强烈的抗肿瘤免疫反应,包括诱导Treg下调、激活记忆T细胞、增强Th1细胞因子的表达和抑制Th2细胞因子的表达。因此,rAd.Light作为一种有效的治疗乳腺癌的方法,具有广阔的发展前景。
首先我们需要获得rAd.light、rAd.Null、Ad.light和Ad.Null四种病毒。实验室前期已经构建了rAd.light、rAd.Null、Ad.light和Ad.Null四种重组腺病毒,并且已制备rAd.Null和Ad.Null两种对照病毒。在此基础上,我们对rAd.light和Ad.light病毒进行了扩增,并利用氯化铯密度梯度法进行纯化。采用分光光度法测定病毒颗粒滴度(virus particle,vp),rAd.light为1.2×1013vps/mL,rAd.Null为1.3×1012vps/mL,Ad.light为1.4×1013vps/mL,Ad.Null为1.4×1012vps/mL。通过半数组织培养物感染剂量法(TCID50)测定病毒感染滴度(每毫升感染单位(IU)),rAd.light为1.8×109IU/mL,rAd.Null为8×109IU/mL,Ad.light为2.5×109IU/mL,Ad.Null为8×109IU/mL。上述结果表明,我们已经成功获得了纯度与滴度均满足后续实验的病毒。
其次,我们检测了Light对乳腺癌细胞增殖和凋亡影响。小鼠乳腺癌细胞系4T1细胞分别感染Ad.Light和rAd.Light,感染48h后采用流式细胞术检测LIGHT蛋白的表达情况,检测结果表明,两种病毒均可很好地介导4T1细胞表达LIGHT。4T1细胞分别感染Ad.Light和Ad.Null,感染48h后利用CCK8法检测LIGHT对4T1细胞增殖的影响。结果表明,与Ad.Null组相比,Ad.Light组4T1细胞存活率降低,表明LIGHT可以抑制4T1细胞的增殖。用不同颗粒滴度的Ad.Light和Ad.Null感染4T1细胞,感染48h后,流式细胞术检测细胞凋亡情况。结果表明,与对照Ad.Null组相比,Ad.Light组细胞凋亡比例更高,且随着病毒颗粒滴度的增加,细胞凋亡比例增加。因此,我们推测LIGHT可能通过抑制肿瘤生长,同时促进细胞凋亡发挥抗肿瘤作用。
然后,对rAd.Light治疗乳腺癌移植瘤的疗效进行评价。我们使用小鼠乳腺癌4T1细胞,小鼠背部皮下注射的方法建立小鼠乳腺癌移植瘤模型,注射剂量为1×106细胞/只小鼠。荷瘤后第7天对小鼠进行随机分组,分为buffer对照组,rAd.Null和rAd.Light两个治疗组。在荷瘤后第7和10天分别进行肿瘤瘤内给药,治疗组病毒给药剂量为2.5×1010vps/次/只小鼠,buffer组注射200μL的PBS。荷瘤后第7、14、18、21、25天记录肿瘤体积变化。荷瘤后第25天处死小鼠,取肿瘤组织,测量瘤重;HE染色进行组织病理学分析。结果表明,溶瘤腺病毒rAd.Null或rAd.Light均可抑制4T1移植瘤模型中肿瘤的生长,与rAd.Null组相比,rAd.Light对肿瘤生长的抑制作用更强。HE染色后可观察到溶瘤腺病毒治疗组肿瘤坏死面积增大,且rAd.Light组效果更明显。上述结果表明rAd.Light可促进肿瘤细胞坏死,抑制肿瘤生长。
最后,对rAd.Light治疗乳腺癌移植瘤的机制进行初步研究。荷瘤后第15和19天取外周血检测T淋巴细胞表型改变。荷瘤后第25天处死小鼠,取肿瘤组织,免疫组化检测CD3和Caspase-3的表达(包括CD3、CD4、CD8、Treg、Tmemory);提取RNA,通过实时定量PCR法检测LIGHT受体(包括LTβR和HVEM)、Th1型细胞因子(包括IL-2、IFN-γ和TNF-α)和Th2型细胞因子(包括TGF-β和IL-10)的表达情况。肿瘤组织免疫组化分析结果显示,治疗组CD3+T细胞浸润比例增加,caspase3阳性凋亡细胞比例增加,且rAd.Light组比例更高。实时定量PCR结果显示,溶瘤腺病毒治疗后LIGHT受体LTβR和HVEM表达均升高,且rAd.Light组比rAd.Null组升高更明显,二者之间的差异具有统计学意义。Th1型细胞因子表达上调,Th2型细胞因子表达下调,且与rAd.Null组相比,rAd.Light组调节作用更强。流式细胞术检测小鼠外周血T淋巴细胞,可看到溶瘤病毒治疗后CD4+T淋巴细胞比例下调,CD8+T淋巴细胞比例上调。且与rAd.Null组相比,rAd.Light组出现时间更早,作用更强。rAd.Light治疗后CD4+CD25+Foxp3+Treg细胞的比例降低。此外,我们还发现溶瘤腺病毒治疗后CD62LHighCD44+记忆T细胞百分比上调,且rAd.Light组发挥作用时间更早,效果更强。上述结果表明,rAd.Light通过促进肿瘤局部CD3+细胞浸润,肿瘤细胞凋亡,LIGHT及受体表达,调节Th1/Th2细胞因子平衡,从而调节肿瘤局部微环境;通过增加CD8+T淋巴细胞比例、促进CD4+T记忆细胞、减少调节性T细胞,从而增强机体抗肿瘤免疫反应。
综上所述,LIGHT和溶瘤腺病毒均可诱导乳腺癌细胞的凋亡和死亡。在小鼠乳腺癌皮下移植瘤模型中,rAd.Light通过诱导肿瘤细胞凋亡和死亡,引起强烈的抗肿瘤免疫反应,包括诱导Treg下调、激活记忆T细胞、增强Th1细胞因子的表达和抑制Th2细胞因子的表达。因此,rAd.Light作为一种有效的治疗乳腺癌的方法,具有广阔的发展前景。