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目的探讨癌症患者外周血中CD4+CD25+调节性T(regulatory T,Treg)细胞的变化及其机制;体外表达hGITRL并制备特异性单克隆抗体,为进一步研究GITRL-GITR(glucocorticoid-induced TNF receptor)信号转导途径干预Treg细胞的免疫抑制功能奠定基础。方法(1)通过流式细胞仪(flow cytometry,FCM)技术检测癌症患者外周血CD4+CD25+ T细胞及CD8+ T细胞、CD16+CD56+NK细胞亚群比例。(2)利用癌症患者恶性胸水(5例)体外培养CD4+CD25-T细胞,并通过RT-PCR检测被诱导细胞的FOXP3基因表达,FCM动态检测CD4+CD25+FOXP3+ T细胞比例,淋巴细胞增殖试验和抑制试验鉴定诱导性CD4+CD25+ T细胞的生物学功能。(3)采用RT-PCR方法,从人脐静脉内皮细胞株(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)中获得hGITRL(human hGITRL)基因,并克隆至pMD-18T载体,选择阳性克隆进行酶切鉴定和序列测定。(4)从全长质粒hGITRL-pMD-18T中扩增hGITRL胞外段(hGITRL(aa52~177)),克隆至表达载体pQE30;将阳性重组质粒转化至大肠杆菌M15,IPTG诱导蛋白表达;表达蛋白用Ni2+-IMAC柱纯化、复性并通过Western blot进行鉴定,FCM检测hGITRL(aa52~177)重组蛋白与活化淋巴细胞上GITR的结合能力,淋巴细胞增殖试验分析其生物学活性。(5)重组hGITRL(aa52~177)免疫Balb/c小鼠,通过细胞融合和克隆技术,筛选分泌获得抗GITRL抗体的杂交瘤细胞株,并通过ELISA、Western blot和FCM对单克隆抗体进行鉴定。结果(1)与健康对照组(n=30,4.7±1.2%)相比,癌症患者治疗前(n=56,12.4±5.6%)与治疗后(n=72,11.2±5.2%)CD4+CD25+ T细胞比例均明显升高,但治疗前与治疗后组间无明显差异;鳞癌(n=33,11.4±5.6%)与腺癌(n=45,12.5±5.8%)患者CD4+CD25+ T细胞比例无明显差别。(2)在恶性胸水诱导下,FCM显示有12.5±3.4%的CD4+CD25-T细胞可转化为CD4+CD25+FOXP3+ T细胞,RT-PCR证实这些被诱导的CD4+CD25- T细胞有FOXP3基因mRNA表达。诱导性CD4+CD25+ T细胞在抗CD3 mAb(1μg/ml)和IL-2(50U/ml)的刺激下不发生增殖,并能抑制CD4+CD25- T细胞的增殖和IFN-γ的分泌。(3)成功克隆hGITRL基因,其编码区为534bp,编码177个氨基酸残基,与GenBank中公布的序列完全一致。(4)成功构建了hGITRL(aa52~177)-pQE30原核表达载体,表达相对分子质量约15KD的重组蛋白。该蛋白能与活化淋巴细胞膜上受体GITR结合,低浓度时能促进淋巴细胞的增殖,而在高浓度时则抑制了淋巴细胞的增殖。(5)获得两株稳定分泌单克隆抗体的杂交瘤细胞株(Dd9和Dh8)。两株单克隆抗体识别不同的抗原表位,其腹水效价分别为1:1.5×106(Dd9)和1:2×106(Dh8)。Western blot及FCM显示这两株抗体分别能与重组hGITRL和HUVEC膜上GITR发生结合。结论(1)癌症患者外周血CD4+CD25+ T细胞比例明显增多,恶性胸水具有诱导分化CD4+CD25- T细胞表达FOXP3基因的能力,提示癌症患者CD4+CD25+ Treg细胞比例增多源于肿瘤因素。(2)获得hGITRL基因质粒并成功表达了具有生物学活性的hGITRL(aa52~177)重组蛋白,GITR-GITRL相互作用对调节淋巴细胞的增殖具有重要作用。(3)成功制备了抗hGITRL单克隆抗体,为进一步研究hGITRL在免疫应答中的作用及与疾病的关系奠定了基础。