脂多糖激活大鼠肺微血管内皮细胞上Toll样受体4介导的信号转导和辛伐他汀的干预研究

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第一部分大鼠肺微血管内皮细胞上Toll样受体4的表达和其介导的信号通路的研究【目的】脂多糖(LPS)是革兰氏阴性菌(GNB)细胞壁上的主要成分,在GNB感染导致的急危重症急性呼吸窘迫综合症(ARDS)中扮演重要角色。经典的理论是LPS和免疫细胞上Toll样受体4(TLR4)结合,介导免疫反应。但是有证据表明TLR4也分布在某些非免疫细胞上,这些细胞也能够被LPS激活,通过分泌炎性细胞因子,调节免疫反应,参与病理过程。本文探讨在大鼠肺微血管内皮细胞上是否存在TLR4表达和LPS激活的TLR4介导的信号通路,为ARDS的发病机制和治疗提供理论依据。【方法】体外培养大鼠肺微血管内皮细胞,应用Ⅷ因子相关抗原间接免疫荧光染色法进行鉴定。用RT-PCR测定各种Toll样受体家族成员在大鼠肺微血管内皮细胞上的mRNA表达。用免疫荧光,流式细胞仪分析TLR4蛋白在细胞上的定位。用免疫荧光,荧光素酶报道基因和Western blot分析LPS对TLR4信号的激活,用RT-PCR分析TLR4激活以后促炎性细胞因子TNF-α和诱导型一氧化氮合成酶(inducible nitric oxidesynthase,iNOS)的mRNA表达。用TLR4抗体阻断技术和NF-κB的抑制剂Aspirin分析LPS刺激TLR4介导的信号通路。【结果】(1)根据文献报道的方法,我们从大鼠肺组织中分离培养得到微血管内皮细胞,这些细胞为铺路石形,可以连续传2—5代,并表现为Ⅷ因子阳性。(2)各种Toll受体mRNA在正常未受干预微血管内皮细胞上表达程度不同,TLR5和TLR9无表达,而TLR4表达最高(P<0.01)。(3)免疫荧光显示TLR4在大鼠肺微血管内皮细胞膜上呈阳性,少量分布在细胞质中,流式细胞仪表明95%的细胞显示细胞膜上很强的TLR4分布。(4)用LPS刺激1、3、6小时后5NK、p38表达均增加(P<0.01),还引起IκB-α降解(P<0.01),导致NF-κB的亚基p65入细胞核。(5)LPS可以明显增加TNF-α和iNOS的mRNA的表达(P<0.01),呈现时间反应,在LPS刺激72小时后TNF-α和iNOS的表达达到高峰。(6)培养基中使用TLR4的抗体和Aspirin可以几乎完全阻断LPS引起的IκB-α降解、p65入核以及TNF-α和iNOS mRNA表达的增加。【结论】(1)TLR4在大鼠肺微血管内皮细胞上的确呈高表达,并且绝大多数分布在细胞膜上。(2)在大鼠肺微血管内皮细胞上LPS能够激活TLR4下游多个信号转导分子JNK、p38和NF-κB,启动炎性反应。(3)应用TLR4抗体和NF-κB抑制剂Aspirin能够几乎完全阻断LPS刺激引起的炎性细胞因子TNF-α和iNOS的表达增加,高度提示了在大鼠肺微血管内皮细胞上LPS是主要通过TLR4介导激活NF-κB而完成信号转导,导致内皮细胞活化,使内皮参与活跃的免疫反应,在GNB致病过程中进一步利用工具药说明了以往的报道及理论的正确性。第二部分辛伐他汀对TLR4受体的表达和其下游信号转导过程的影响【目的】研究辛伐他汀对TLR4所介导的信号的抑制作用,探讨辛伐他汀成为临床上潜在的抗炎药的可能性,【方法】体外培养大鼠肺微血管内皮细胞,用Western blot分析辛伐他汀处理大鼠肺微血管内皮细胞后TLR4蛋白质表达。用免疫荧光,荧光素酶报道基因和Western blot分析辛伐他汀对LPS—TLR4信号通路的抑制作用。分别用RT—PCR和ELSIA分析辛伐他汀对LPS诱导的促炎性细胞因子TNF-α和iNOS的mRNA和蛋白质表达的影响。【结果】(1)辛伐他汀处理大鼠肺微血管内皮细胞引起TLR4的蛋白质表达下调,并且作用表现为时间依赖性(P<0.01),在72小时最明显。(2)辛伐他汀抑制了TLR4激活以后的IκB-α的降解,p65的入核和NF-κB的转录活性(P<0.01)并且这种作用出现在TLR4蛋白质表达下调之前。(3)辛伐他汀抑制LPS对促炎性细胞因子TNF-α和iNOS的mRNA和蛋白质表达的诱导,呈剂量效应正相关(P<0.05)。【结论】辛伐他汀能够抑制TLR4的表达和干扰其介导的信号通路。因此辛伐他汀作为一种潜在的有临床应用前途的抗炎药,有可能用于治疗TLR4相关的炎症性疾病,为临床上防治肺部炎症反应ALI/ARDS等提供新思路。
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