在植物细胞中,活性氧（ROS）和抗坏血酸（AsA）的含量保持在一个相对稳定的平衡状态对植物防御环境胁迫起到了至关重要的作用;因此,整个代谢过程中氧化物和还原物在时间和空间上必须受到严格的控制。ASA在植物体内具有多种的生理功能,作为还原剂在非生物逆境胁迫下清除植物体内产生的H202,提高植物的耐受性起到重要的作用。目前,植物体内已经被发现存在有多条ASA的生物合成途径,L-半乳糖途径是植物中AsA最主要的生物合成途径,而VTC1则是这个途经中的一个关键的AsA合成酶,它在拟南芥中被定点突变后导致ASA的含量下降了 70%左右。最近的研究报道了VTC1与CSN5B能够相互作用影响ASA的含量变化,在黑暗条件下CSN5B能通过26S蛋白酶体途径降解VTC1负向调控AsA的含量;但是在光照和多种非生物胁迫条件下CSN5B是如何调控ASA含量变化的机制却仍不明确。在本研究中,我们从模式植物拟南芥中分离了一个未知功能的基因,命名为AtOxR。表达特性的研究显示AtOxR的表达与多种非生物胁迫存在应答,并受到了光循环的强烈诱导,过表达AtOxR基因的酵母和拟南芥转基因植株,以及AtOxR-RNAi拟南芥的突变体植株的表型分析结果显示,AtOxR基因能够正向调控酵母和拟南芥对多种非生物胁迫和氧化胁迫的耐受性。我们利用酵母双杂交技术在拟南芥的cDNA文库中筛选并鉴定了与AtOxR存在相互作用的蛋白。这个蛋白是光形态建成因子COP9复合体的亚基5B（CSN5B）,应用酵母共转化、体外pull-down分析和双分子荧光互补分析验证了 AtOxR与CSN5B之间的相互作用。这暗示了 AtOxR与VTC1对ASA的合成相关。AsA表达水平和H202含量测定的结果显示,在氯化钠、甘露醇、氯化铜和过氧化氢的胁迫下,过表达AtOxR基因的转基因拟南芥植株相对于野生型拟南芥植株中拥有更高的AsA含量和更低的H202含量。这些数据表明,AtOxR-CSN5B相互作用能够正调控AsA的生物合成并提高拟南芥对于多种非生物胁迫和氧化胁迫的耐受性。因此,我们认为在多种非生物胁迫条件下（或光条件下）,AtOxR-CSN5B相互作用能够抑制26S蛋白酶体途径去降解VTC1并保持植株内较高的AsA含量,这有利于通过H202清除提高过表达AtOxR基因的转基因拟南芥植株对多种非生物胁迫和氧化胁迫的耐受性。