热水浸提法提取鹿茸胶原蛋白工艺研究

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  1 试验方法
  1.1 胶原蛋白的提取
  取干鹿茸30g,粉碎匀浆,加入1500ml蒸馏水匀浆抽提,离心分(10000r/min,20min)。残渣用8倍NaOH溶液搅拌过夜,离心分离(10000r/min,20min),重复用碱洗三次,去除上清液,将沉淀用蒸馏水冲洗,离心(10000r/min,20min),如此反复2次。加60%乙醇1000mL,4℃浸提48h,纱布过滤,离心,上清液于50℃、60r/min旋转蒸发回收乙醇,提取液置于截流分子量范围8~15kDa的透析袋中,对蒸馏水透析24h,-20℃预冻24h,冻干,即得鹿茸胶原。
  1.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳
  采用DYCZ-24D型垂直板凝胶电泳槽,采用浓度为10%的分离胶和浓度为5%的浓缩胶,浓缩胶电压为70mV,分离胶电压140mV。采用考马斯亮蓝R250进行染色,最后用脱色液(甲醇∶冰醋酸∶蒸馏水=4.5∶4.5∶1)脱色,至背景清晰,观测分子量范围。电泳各储液放入0~2 ℃的冰箱中,隨取随用;电泳缓冲液pH值为8.3。采用的标准蛋白为:兔磷酸化酶B(97400);牛血清白蛋白(66200);兔肌动蛋白(43000);牛碳酸酐酶(31000);胰蛋白酶抑制剂(20100);鸡蛋清溶菌酶(14400)。
  配制完胶后,迅速沿着电泳槽的玻璃板边缘将胶倒入电泳槽,先到分离胶,至胶液面离玻璃板凹槽3.5厘米左右。然后在胶面上轻轻铺1cm高的水,垂直放置20~30分钟左右使之凝聚。然后吸出胶面上的水,倒入浓缩胶,使胶液面与玻璃板凹槽处平齐,然后插入梳子,室温放置使其凝固。待凝胶完全凝后,取下梳子,拆掉胶条,重新安装好电泳槽后,倒入电极缓冲液。检查板是否漏液,若不漏则可点样了。
  点样:将样品液与加样缓冲液等体积混合后,即可用微量注射器在孔中点样。每孔上样量为20μL。加样完毕后,打开电源(负极接上槽,正极接下槽),电流初为15mA,当前沿指示剂进入分离胶后调节电流为20mA。待指示剂迁移至距下口约1cm时,关闭电源。整个电泳所需时间约为6h。
  1.3 紫外分析
  对提取的胶原溶液用紫外可见分光光度计测量其吸收光谱。实验中应选用石英比色皿,分光光度计的波长选在200一500nm之间。
  1.4 氨基酸分析
  取上述胶原冻干品约25mg,2mL6mol/LHCl水解24h,蒸干,采用1100系列高效液相进行氨基酸含量测定。衍生试剂:2,4-二硝基氟苯(FDNB);流动相A:乙腈∶水(55∶45);流动相B:KH2PO4,PH=7.2;梯度洗脱,流速1mL/min,进样量10μL。
  在20 种常见氨基酸中,甘氨酸、脯氨酸和丙氨酸含量最高,其中甘氨酸含量几乎占了1/3,为33.24% ,脯氨酸和丙氨酸含量分别为11.64% 和11.78% ;组氨酸和酪氨酸含量较低,没有检测出胱氨酸;非常见氨基酸———羟脯氨酸的含量也非常高,为11.20% 。另外,羟脯氨酸和脯氨酸比值为0.8,和Ⅰ型胶原(0.7~0.8)一致。
  2 结果分析
  2.1 电泳结果分析
  1.对提取的胶原蛋白进行不同倍数的稀释,稀释倍数为3倍,5倍,10倍。
  电泳图片如下:见图一.
  说明:图片中所显示的,第一条带为标准蛋白maker,2-4条带为稀释3倍的胶原蛋白样品,5-7条带为稀释5倍的胶原蛋白样品,8-10条带为稀释10倍的胶原蛋白样品,电泳图片表明稀释5倍的条带比较清晰。图片显示蛋白分子量为116kDa左右,符合相关文献的报道,提取的胶原为Ⅱ型胶原蛋白。
  2.2 紫外分析结果
  通过在200—500nm的波长下对稀释不同倍数的样品进行扫描,获得了较好的效果,最大吸收波长均在230nm,与文献报道的Ⅰ型胶原蛋白的最大吸收波长一致。结果见图四
  3 结论
  (1)鹿茸为原料提取胶原蛋白,方法简便易行,从对其冷藏条件下为冻状可以鉴定出所提取的物质为胶原。
  (2)从电泳的结果看,所提取的物质为胶原的水解产物,胶原蛋白或者是明胶,因为胶原的分子量为300kDa,但其水解后的产物胶原蛋白的分子量为十万左右,符合文献的报道。
  (3)从紫外分析的结果看,所提取的物质中含有Ⅰ型胶原蛋白。
  基金项目:锡林郭勒职业学院研究课题(编号:QN-2019-02)。
  (作者单位:锡林郭勒职业学院)
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