骨髓间充质干细胞外泌体通过调节树突状细胞功能促进异体移植免疫耐受

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研究背景骨髓间充质干细胞来源的外泌体(Bone mesenchymal stem cells-derived exosomes,B-exo)在促进骨修复和调节免疫应答方面都发挥着重要功能。外泌体作为骨髓间充质干细胞(Bone mesenchymal stem cells,BMSCs)发挥功能的一种新途径,能够作用于多种免疫细胞从而调节免疫功能。树突状细胞(Dendritic cells,DCs)作为最重要的抗原提呈细胞,能否受到B-exo的影响从而促进免疫耐受。这可能在移植免疫相关的研究领域拥有广泛的应用前景。研究目的本项研究旨在探讨B-exo是否能够通过调节树突状细胞的致耐受功能从而促进移植免疫耐受。材料与方法从小鼠骨髓细胞中分离培养BMSCs和DCs并进行鉴定。分离纯化BMSCs培养上清中的外泌体,利用透射电镜、粒径分析和特异性蛋白检测对外泌体进行定性分析。将BMSCs和DCs混合培养48h后,收集上层DCs对其表面标志物以及炎症相关细胞因子的mRNAs表达水平进行检测。然后将分离纯化的B-exo与DCs进行共培养,收集DCs检测吲哚胺2,3-二氧化酶(indoleamine 2,3-dioxygenase,IDO)的mRNA和蛋白表达水平。将处理后的DCs与小鼠脾脏的na(?)ve CD4+T细胞共培养,分析CD4+T细胞增殖情况和CD4+CD25+Foxp3+T细胞占比。最后,我们将BALB/c小鼠皮肤移植至C57小鼠背部,建立小鼠异体皮肤移植模型;同时将不同处理组的DCs通过尾静脉回输受体体内。观察皮肤移植物存活时间,在术后12天进行组织学检测并对受体脾脏中CD4+CD25+Foxp3+T细胞的占比情况进行分析。结果我们能够成功地对BMSCs进行成骨、成脂和成软骨分化,同时BMSCs表达与细胞干性相关的表面标志物。在诱导培养过程中DCs形成典型的细胞集落,在用脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)刺激成熟后,未成熟 DCs(immature DCs,imDCs)表面的CD80、CD86和主要组织相容性复合体Ⅱ(major histocompatibility complex class Ⅱ,MHC-Ⅱ)分子的表达量显著低于成熟 DCs(mature DCs,mDCs)。透射电镜显示B-exo呈杯状的双层膜结构;粒径分析提示外泌体直径分布只有一个峰值:89 nm。Western Blot显示外泌体表达特异性标志蛋白。在与BMSCs共培养后,DCs的表面分子(CD80、CD86和MHC-Ⅱ)以及促炎细胞因子(IL-6和IL-27)的mRNAs表达量降低,而抑炎细胞因子(TGF-β、IL12、IL-10)的mRNAs表达量升高。上述BMSCs对DCs的作用在加入GW4869(外泌体抑制剂)后被部分抑制。DCs中IDO的蛋白和mRNAs表达水平在一定范围内随着BMSCs-exo浓度的增加而增加。B-exo处理过的DCs可抑制CD4+T细胞的增殖并诱导CD4+CD25+Foxp3+T细胞的分化。上述B-exo对DCs的作用在加入1-甲基-色氨酸(1-methyl tryptophan,1MT)(IDO抑制剂)后被部分抑制。最后,在小鼠皮肤移植模型中,B-exo共培养过的DCs能够延长皮肤移植物的存活时间、保持较完整的皮肤组织结构,并且在受体小鼠脾脏中提高CD4+CD25+Foxp3+T 细胞的占比。结论综上所述,B-exo能够抑制DCs的成熟过程,并通过提高IDO的表达量强化DCs的免疫调节功能,从而促进异体皮肤移植的免疫耐受。
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