目的:1.提取ADMSCs-Exo（adipose-derived mesenchymal stem cells derived exosomes,脂肪间充质干细胞来源外泌体）,并鉴定其生物学特性。2.观察ADMSCs-Exo对大鼠颈动脉球囊损伤的影响。方法:1.ADMSCs（adipose-derived mesenchymal stem cells,脂肪间充质干细胞）分离培养、传代及鉴定:酶消化法培养ADMSCs,流式细胞技术检测第3代ADMSCs表面特异性抗原,同时诱导其向成脂、成骨分化,3周后观察细胞分化情况并分别用油红O及茜素红染色等鉴定。2.ADMSCs-Exo提取及鉴定:ADMSCs用去外泌体胎牛血清培养48小时后采用Exo-spin TM法提取外泌体,并通过TEM（transmission electron microscopy,透射电子显微镜）、NTA（nanoparticle tracking analysis,纳米颗粒追踪分析法）、WB（western blot,蛋白免疫印迹法）对其进行鉴定。3.观察ADMSCs-Exo对大鼠颈动脉球囊损伤的影响3.1大鼠颈动脉球囊损伤模型构建及分组:将45只体重约300～350g的雄性SD大鼠随机分为3组:对照组、损伤组、外泌体组。其中对照组行颈部皮肤切开缝合,外泌体组及损伤组构建颈动脉球囊损伤模型,同时静脉分别予外泌体及等量的生理盐水进行治疗。分别于术后14d、28d时处死大鼠,取左侧颈总动脉。3.2 HE（hematoxylin-eosin,苏木精-伊红）染色观察颈总动脉血管形态学改变;通过image成像法测定IA（intima area,内膜面积）、MA（media area,中膜面积）,以内膜/中膜（I/M）比值评价颈动脉内膜增生水平。3.3伊文氏蓝染色观察血管内皮化情况,并以内皮化面积/血管总面积比值评价血管损伤修复水平。结果:1.ADMSCs细胞呈贴壁生长,形态多为长梭形,部分为多边形,并聚集性生长;第3代ADMSCs细胞流式学结果显示:CD29、CD90、CD34、CD45、CD31表达阳性率分别为87.6%、97.9%、37.9%、6.2%、0.9%;成脂诱导3周后镜下可见脂滴形成,呈圆形,部分融合成团块,形态饱满,油红O染色呈橘红色;成骨诱导3周后镜下可见细胞排列紊乱,显示不清,存在白色高密度物质,茜素红染色呈淡橘色;证实了分离培养的ADMSCs是符合MSCs（mesenchymal stem cells,间充质干细胞）国际标准。2.TEM下观察ADMSCs-Exo呈现出典型的圆形膜结构,内含低密度物质,NTA结果显示大部分粒子都处于30～150nm范围内,含量最多的粒径大小约为137.0nm,占99.4%,其浓度为4.1×10~6Particles/m L,符合外泌体的形态及大小;WB结果显示外泌体特异性抗体CD81表达阳性,与相关文献描述一致。3.ADMSCs-Exo对大鼠颈动脉球囊损伤内膜增生及内皮化影响3.1HE染色结果显示:在术后14d、28d时观察对照组大鼠颈总动脉血管结构完整,管腔正常,无新生内膜形成;损伤组管壁增厚,管腔狭窄,内弹力板被破坏,血管平滑肌细胞增殖活跃,内膜大量增生,而外泌体组相比损伤组管壁增厚、管腔狭窄及内膜增生程度明显减轻。计算IA、MA、I/M比值,结果显示术后14d时,外泌体组的I/M比值低于损伤组,差异有显著的统计学意义（0.18±0.01vs 0.27±0.06;n=5;P<0.05）,在28d时也有显著的统计学差异（0.22±0.03 vs0.41±0.05;n=5;P<0.05）。3.2伊文氏蓝染色结果显示术后14d时:对照组血管内皮完整,未见明显内皮被染成蓝色;损伤组可见大面积片状不规则的血管内皮被染成蓝色;外泌体也可见到部分较规则血管内皮被染色;与对照组相比,损伤组内皮化面积/血管总面积比值显著降低（75.41±4.29%vs 97.49±0.98%;n=5;P<0.05）,而外泌体组可改善球囊损伤后颈动脉内皮化,与损伤组相比,外泌体组内皮化面积/血管总面积比值显著增加（86.07±2.94%vs 75.41±4.29%;n=5;P<0.05）。结论:1.通过脂肪组织可获取具有多潜能分化的ADMSCs细胞;2.Exo-spin TM法可成功提取纯化ADMSCs细胞上清液外泌体;3.ADMSCs-Exo可抑制SD大鼠颈动脉损伤后内膜增生狭窄;4.ADMSCs-Exo可促进SD大鼠颈动脉损伤后内皮化。