SDPR在非小细胞肺癌中的生物学功能及相关机制研究

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目的
  检测SDPR基因在人肺癌中的表达水平和甲基化状态;研究SDPR对非小细胞肺癌细胞生物学作用的影响;探讨SDPR对紫杉醇、5-氟嘧啶和顺铂三种化疗药物在非小细胞肺癌中作用;初步探索SDPR在非小细胞肺癌中发挥抑癌作用的潜在机制。
  方法
  1.人肺癌组织和人肺癌细胞系中SDPR表达水平检测:以肺癌患者癌组织和癌旁组织为研究对象,采用免疫组化检测组织中SDPR的表达水平。通过RT-PCR检测6种人肺癌细胞系(H1299、H2122、H358、H446、H460、A549)和正常肺组织中SDPRmRNA的水平。
  2.SDPR在肺癌中甲基化状态:通过MSP对上述细胞、支气管灌洗液的甲基化状态进行检测,从而明确SDPR沉默是否与其甲基化相关。
  3.转染(过表达/沉默)效率验证:携带人SDPR过表达基因的重组质粒M98-SDPR及其阴性对照M98-vector和针对SDPR的小干扰RNAsiSDPR及其阴性对照siNC分别用于感染相对低表达和高表达SDPR的人肺癌细胞株,并通过RT-PCR和Westernblot验证过表达或干扰效果。
  4.SDPR对NSCLC生物学作用的影响:通过CCK8、克隆形成、Transwell小室法、流式细胞术(FCM)和AO/EB检测肺癌细胞的生物学功能。通过动物实验,验证SDPR在体内抑制作用。
  5.SDPR对肺癌细胞紫杉醇、5-氟嘧啶和顺铂的化疗敏感性影响:采用CCK8检测药物处理后的吸光度(450nm),并基于吸光度计算抑制率,从而明确SDPR在化疗中的增敏作用。
  6.SDPR在非小细胞肺癌的机制研究:采用Westernblot检测周期相关蛋白以及p53/p21的表达水平,从而反映SDPR作用于人肺癌细胞的信号通路。
  结果
  1.SDPR在肺癌组织中的蛋白表达量显著低于癌旁。同时检测肺癌和非癌患者的支气管灌洗液,仅在肺癌患者中发现SDPR的甲基化。对肺癌细胞进行MSP,发现正常肺组织(LN)SDPR没有甲基化,而多数肺癌细胞却发生了SDPR的甲基化。
  2.M98-Vector与M98-SDPR分别转染H1299细胞,siNC与siSDPR分别转染A549细胞。RT-PCR和Westernblot结果证实,SDPR在H1299和A549细胞中成功过表达/沉默。
  3.CCK8检测结果显示,异位表达的SDPR导致H1299细胞生长显著降低,而siRNA介导的SDPR的沉默导致A549细胞生长明显增加,差异有统计学意义(P<0.05)。过表达的SDPR致使H1299细胞的集落形成能力降低(P<0.001),SDPR的沉默导致A549细胞集落形成能力增加(P<0.001)。Transwell结果表明,异位表达SDPR能减弱H1299细胞的迁移和侵袭。而沉默SDPR能增强A549细胞的迁移和侵袭。FCM结果证实SDPR过表达能诱导细胞周期停滞在G2/M期。
  AO/EB和FCM分析显示,分别用M98-SDPR和M98-vector转染H1299细胞,M98-SDPR组H1299细胞的凋亡率显著高于M98-vector组,差异具有统计学意义(P<0.05)。分别用siNC和siSDPR转染A549细胞,从AO/EB染色后的图像中可以看出,siSDPR组A549细胞凋亡率明显比siNC组低(P<0.01)。
  4.通过动物实验,我们发现M98-vector组和M98-SDPR组均可在体内成瘤。通过剥离小鼠体内肿瘤并测量其体重,我们发M98-vector组瘤体重量明显高于过表达组(P<0.05)。通过对肿瘤生长曲线进行绘制,我们观察到M98-SDPR组肿瘤的增殖速度被显著阻抑(P<0.01)。免疫组化和苏木精-伊红染色结果显示:在SDPR过表达组中细胞增殖标记物Ki-67表达降低,核碎裂增强。进一步分析瘤体成分发现,SDPR能上调P21,下调cyclinB1的mRNA水平。
  5.CCK8结果分析显示,SDPR过表达后加强了紫杉醇(PTX)和5-FU对非小细胞肺癌细胞抑制作用(P<0.05)。沉默SDPR则使这种作用降低(P<0.05)。同时SDPR对顺铂在NSCLC细胞的作用不具有统计学意义。
  6.Westernblot检测结果表明,在p53缺失的H1299细胞中,SDPR可以提高cyclinB1,降低p21和p-cdc2的蛋白水平。相反,在A549细胞中siRNA介导的SDPR沉默会增加cyclinB1,并降低p53,p21和p-cdc2的蛋白表达。
  结论
  SDPR可以通过启动子甲基化沉默,它是致敏肿瘤细胞重要的抑癌基因,也可能是肺癌诊断重要的甲基化标志物以及潜在的治疗靶点,为肺癌的诊治提供新的线索。
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