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摘要 为进一步研究益生菌对仔猪生长性能、腹泻率和血清生化指标、免疫指标的影响，选取1 000头健康状况良好、平均始重（8.31±0.33）kg、（35±2）日龄的三元杂交断奶仔猪，随机分成对照组和试验组2组，对照组不添加任何益生菌和抗生素，试验组每1 000 kg饮水中添加1 L的益生菌。结果表明：饮水中添加复合益生菌能够较好地改善仔猪的生长性能，提高仔猪的日增重，降低料重比（P<0.05），降低仔猪腹泻率（P<0.05），提高仔猪的免疫力（P<0.05）。
关键词 益生菌;免疫指标;生长性能;血清生化指标
中图分类号 S816.7 文献标识码 A
文章编号 0517-6611（2020）11-0110-03
Abstract In order to further study the effects of probiotics on the growth performance， diarrhea rate， and serum biochemical and immune indices of piglets， a total of （35±2） dayold 1 000 “Duroc×Landrace×Yorkshire” crossbred healthy piglets with the average initial body weight of （8.31±0.33） kg were randomly divided into control group and experimental group.The piglets in the control group were only fed with the a basal diet without probiotics and antibiotics，and the piglets in the experimental group were fed with the diet adding 1 L probiotics per 1 000 kgof drinking water.The results showed that adding compound probiotics in the drinking water could improve the growth performance of piglets， increase the daily gain of piglets， reduce the ratio of material to weight （P<0.05）， reduce the diarrhea rate of piglets （P<0.05） and improve the immune function of piglets （P<0.05）.
Key words Probiotics;Immune indices;Growth performance;Serum biochemical indices
现代养猪业提倡利用仔猪早期断奶来提高母猪的生产性能，但仔猪的早期断奶容易引起断奶应激综合症的产生，从而影响仔猪的生产发育[1]。抗生素的耐药性及残留性带来的安全问题，使得人们不得不寻找新的方法来解决仔猪的断奶应激问题。益生菌能够调整仔猪肠道微生物环境，改善仔猪肠道微生物的种群结构，有效降低仔猪断奶应激综合症[2-3]。目前，在猪生产中应用的益生菌种类主要有乳酸杆菌类和芽孢杆菌类两大类。乳酸杆菌类主要包括嗜酸乳酸杆菌和双歧杆菌;芽孢杆菌类主要包括枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌[4]。益生菌在提高仔猪生长性能、改善仔猪免疫力有显著效果，益生菌在使用时主要通过饲料的方式进行添加，使用量较大，成本较高，而通过饮水系统进行添加的方式研究较少[5]。笔者选择通过饮水系统来添加益生菌，研究益生菌對仔猪生长发育及免疫力的影响，以期为益生菌制剂在猪的使用方法及其合理添加应用提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料 饮水专用复合益生菌购自康源绿洲生物科技（北京）有限公司，主要由乳酸菌、酵母菌、双歧杆菌及其他有益菌组成，有效益生菌含量2.00×1010/mL。
1.2 试验动物 试验选用（35±2）日龄、平均始重为（8.31±0.33）kg的“杜×长×大”三元杂交断奶仔猪1 000头，随机分为试验组和对照组，每组500头，分别在独立猪舍进行饲喂，每栋猪舍24个猪栏，每个猪栏饲养20～25头猪。
1.3 饲粮营养水平及饲养管理
按照不同生长阶段饲喂全价配合饲料，其营养水平见表1。对照组饲喂基础饲粮，自由采食和饮水;试验组为益生菌添加组，饲喂基础饲粮，每1 000 kg饮水中添加1 L的益生菌，自由采食和饮水。猪舍全封闭，采用水帘、风扇降温，全程自动喂料，按照猪场常规免疫程序进行疾病防控。
1.4 样品采集及处理
分别在仔猪进场后第3天和第35天，在试验组和对照组每栏每头猪随机采集5 mL血液，静置2 h后，3 000 r /min、4 ℃下离心10 min，吸取血清于-20 ℃下低温冷藏保存。
1.5 测定指标与方法
分别在仔猪进场当天（第1天）和出栏时称重，回收剩料，计算平均日增重和料重比，每天上午和下午巡栏2次，计算仔猪腹泻率及死亡率。
腹泻率=[腹泻头次总数/（试验仔猪总头数×试验总天数）]×100%（1）
死亡率=（死亡头数/总头数）×100%（2）
1.6 血液生化指标及抗原测定
利用全自动生化分析仪（迈瑞BS400）分别检测血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三酯、总蛋白、白蛋白的含量;利用江莱生物猪免疫球蛋白ELISA试剂盒检测猪免疫球蛋白M（IgM）、免疫球蛋白G（IgG）、免疫球蛋白A（IgA）、白细胞介素2（IL-2）、白细胞介素6（IL-6）的含量。 1.7 数据统计与分析 采用SPSS 17.0統计软件进行方差分析和显著性检验，P<0.05表示差异显著，P<0.01表示差异极显著。
2 结果与分析
2.1 复合益生菌对断奶仔猪生长性能的影响 由表2可知，试验组与对照组平均始重差异不显著（P>0.05），试验结束时试验组平均末重为127.66 kg，比对照组增加8.22%，但差异不显著（P>0.05）。试验组平均日增重877.21 g，比对照组增加8.85%，且差异显著（P<0.05）。试验组全程料重比为2.15，比对照组降低了0.20，且差异显著（P<0.05）。这表明在饮水中添加复合益生菌能够较好地改善猪的生长性能，提高仔猪的日增重，降低料重比。
2.2 复合益生菌对仔猪健康状况的影响
复合益生菌对断奶仔猪健康状况的影响见表3。由表3可知，在试验第1～7天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率比对照组分别下降17.3%和33.3%;在试验第8～15天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率比对照组分别下降34.48%和25.00%;在试验第16～30天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率较对照组率分别下降59.09%和33.33%。整个试验期间（1～136 d），试验组断奶仔猪腹泻率和其他疾病发生率较对照组分别下降38.09%和37.50%，死亡率降低30%。对照组仔猪腹泻率高于试验组，在第1～7天试验组和对照组仔猪腹泻率均有不同程度升高，在第8～15天仔猪腹泻率逐渐下降，15 d后仔猪处于平稳状态，腹泻和其他疾病偶尔发生。
2.3 复合益生菌对仔猪血清生化指标的影响
复合益生菌对仔猪血清生化指标的影响见表4、5。由表4、5可知，与对照组相比，试验组血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三脂（TG）含量在整个饲喂过程中均差异不显著（P>0.05）。试验组饲喂3 d益生菌后，仔猪血清中总蛋白 （TP）含量达69.25 g/L，比对照组高16.24%，且差异显著（P<0.05）;整个饲养过程中血清总蛋白含量均维持在较高水平。在饲喂35 d后，血清中白蛋白含量为34.86 g/L，比对照组降低13.95%，且差异显著（P<0.05）。
2.4 复合益生菌对仔猪血清免疫指标的影响
复合益生菌对仔猪免疫蛋白含量的影响见表6、7。由表6、7可知，与对照组相比，仔猪饲喂益生菌3 d后血清中白介素-2、IgA的含量均显著高于对照组（P<0.05）;饲喂35 d后，试验组白介素-2、白介素-6、IgG、IgM和IgA的含量均显著高于对照组（P<0.05）。
3 讨论
3.1 益生菌对仔猪生长性能的影响 仔猪提前断奶后由于胃酸分泌不足，肠道菌群微生态平衡被破坏，乳酸菌等有益菌的数量减少，大肠杆菌、沙门氏菌等有害菌的数量增加[6]。陈春月等[7]研究表明猪的饮水量与耗料的比率为2.6时，通过饮水能够迅速增加仔猪肠道中的乳酸菌数量，试验组添加益生菌饲喂3 d后仔猪血清中IL-2、IgA含量均显著高于对照组。肠道微生物种群数量越多，分配的均匀度越高，菌种之间的相互依赖和制约能力越强，抵御外界应激刺激的能力也就越强[8]，试验组通过饮水中添加益生菌能够持续改变仔猪的消化道酸性环境、调节断奶仔猪的肠道菌群平衡、提高其肠道有益菌减少有害菌数量，促进断奶仔猪的肠道发育、提高其饲料消化率和生长性能，试验组断奶仔猪的料重比低于对照组，与麻名汉[9]利用液态发酵饲料饲喂仔猪的研究结果相一致。
3.2 益生菌对仔猪血液生化指标的影响
动物在面对应激反应时体内的物质代谢会发生变化，仔猪在断奶后食物和环境的改变会对仔猪的体内代谢产生较大的影响，血清总蛋白可以反映机体的营养与免疫状况。该研究验中试验组和对照组血清中血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三脂含量在整个饲喂过程中差异不显著，试验组血清中总蛋白含量
在试验组饲喂3 d后达到69.25 g/L，试验过程中血清总蛋白含量都维持在较高水平，差异不显著。对照组血清总蛋白含量在整个断奶期间的变化较大，说明对照组受断奶应激的影响较大。这与宋凡等[10]添加0.2%“蜡样芽孢杆菌+乳酸菌+酵母菌”复合菌剂和孙梅等[11]添加芽孢杆菌复合剂对断奶仔猪血清总蛋白的影响结果相同，说明通过饮水添加益生菌对于减少仔猪应激反应具有显著作用。
3.3 益生菌对仔猪血清免疫指标的影响
仔猪受断奶应激的影响，肠道菌群微生态平衡被破坏，益生菌中的乳酸杆菌作为肠道的一种原籍菌，进入肠道后通过竞争性颉颃作用抑制大肠杆菌和沙门氏菌在肠壁细胞上黏附，与肠上皮表面的特异性受体结合，刺激B淋巴细胞产生免疫球蛋白[12]。邓军等[13]给仔猪饲喂益生菌饲料后，发现仔猪肠道中IL-2、IL-6的基因表达量显著提高，益生菌通过刺激肠黏膜上皮细胞，影响细胞因子的生成，激活B淋巴细胞、提高抗体水平。IgG、IgM、IgA是骨髓来源的B淋巴细胞所产生具有抗菌、抗病毒、抗毒素作用的免疫球蛋白[14]，机体的免疫能力可以通过血清中免疫球蛋白的含量来体现，血清中含量的高低可反映机体体液免疫的强弱[15]。该试验结果显示，饮水中添加益生菌后可以显著提高仔猪血清中IL-2、IL-6、IgG、IgM、IgA的含量，说明通过饮水添加益生菌能够增强仔猪的免疫力。
4 结论
综上所述，通过在饮水中添加复合益生菌能够较好地改善仔猪的生长性能，提高仔猪的日增重，降低料重比，降低仔猪的腹泻率，提高仔猪的免疫力。
参考文献
[1]孙健， 乔立东， 雷莉辉， 等.丁酸梭菌对断奶仔猪生长性能及肠道菌群结构的影响[J].黑龙江畜牧兽医， 2019（12）：103-105. [2] 李玉俠， 舒丹平， 张晓杰， 等.发酵饲料替代抗生素在断奶仔猪日粮中的应用[J].饲料博览， 2018（1）：17-20，24.
[3] 焦莉.微生物组在猪肠道微生物研究中的应用[J].广东饲料， 2018，27（1）：33-36.
[4] 程皇座， 马渭青， 赵旦华， 等.益生菌制剂对生长后期育肥猪生长性能和养分表观消化率的影响[J].黑龙江畜牧兽医， 2019（6）：117-119，122.
[5] 许小友.微生物发酵饲料在养猪生产中的应用[J].吉林农业， 2017（21）：74.
[6] 崔艳红， 韩庆功， 崔艺佳， 等.益生菌复合发酵料对断奶仔猪消化环境、血清生化指标和代谢激素水平的影响[J].西北农业学报， 2018，27（1）：16-23.
[7] 陈春月， 樊薛安，SHAW M I，等.日粮成分对生长猪饮水量的影响[J].国外畜牧学（猪与禽）， 2007，27（6）：25-28.
[8] HOOPER L V，LITTMAN D R，MACPHERSON A J.Interactions between the microbiota and the immune system[J].Science， 2012，336（6086）：1268-1273.
[9] 麻名汉.液体发酵饲料对断奶仔猪肠道健康的影响探究[J].现代畜牧科技， 2017（6）：50.
[10] 宋凡， 曹国文， 戴荣国， 等.复合微生态添加剂对断奶仔猪生产性能与血液生理生化指标的影响[J].饲料工业， 2006，27（8）：36-38.
[11] 孙梅， 张一平， 张宪中， 等.芽孢杆菌制剂对断奶仔猪血液和免疫指标的影响[J].中国畜牧兽医， 2015，42（11）：2991-2998.
[12] 王艳， 皮斌， 张三军.益生菌发酵饲料对仔猪生长和免疫功能的影响[J].兽医导刊，2018（3）：18-19.
[13] 邓军， 李云锋， 杨倩.枯草芽孢杆菌和猪源乳酸杆菌混合饲喂对仔猪肠绒毛发育的影响[J].畜牧兽医学报， 2013，44（2）：295-301.
[14] 杨汉春.动物免疫学[M].北京： 中国农业大学出版社， 2003.
[15] 段雪磊， 巴翠晶， 李得鑫， 等.绞股蓝微粉发酵物对断奶仔猪免疫功能的影响[J].中国兽医学报， 2016，36（11）：1929-1932.
关键词 益生菌;免疫指标;生长性能;血清生化指标
中图分类号 S816.7 文献标识码 A
文章编号 0517-6611（2020）11-0110-03
Abstract In order to further study the effects of probiotics on the growth performance， diarrhea rate， and serum biochemical and immune indices of piglets， a total of （35±2） dayold 1 000 “Duroc×Landrace×Yorkshire” crossbred healthy piglets with the average initial body weight of （8.31±0.33） kg were randomly divided into control group and experimental group.The piglets in the control group were only fed with the a basal diet without probiotics and antibiotics，and the piglets in the experimental group were fed with the diet adding 1 L probiotics per 1 000 kgof drinking water.The results showed that adding compound probiotics in the drinking water could improve the growth performance of piglets， increase the daily gain of piglets， reduce the ratio of material to weight （P<0.05）， reduce the diarrhea rate of piglets （P<0.05） and improve the immune function of piglets （P<0.05）.
Key words Probiotics;Immune indices;Growth performance;Serum biochemical indices
现代养猪业提倡利用仔猪早期断奶来提高母猪的生产性能，但仔猪的早期断奶容易引起断奶应激综合症的产生，从而影响仔猪的生产发育[1]。抗生素的耐药性及残留性带来的安全问题，使得人们不得不寻找新的方法来解决仔猪的断奶应激问题。益生菌能够调整仔猪肠道微生物环境，改善仔猪肠道微生物的种群结构，有效降低仔猪断奶应激综合症[2-3]。目前，在猪生产中应用的益生菌种类主要有乳酸杆菌类和芽孢杆菌类两大类。乳酸杆菌类主要包括嗜酸乳酸杆菌和双歧杆菌;芽孢杆菌类主要包括枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌[4]。益生菌在提高仔猪生长性能、改善仔猪免疫力有显著效果，益生菌在使用时主要通过饲料的方式进行添加，使用量较大，成本较高，而通过饮水系统进行添加的方式研究较少[5]。笔者选择通过饮水系统来添加益生菌，研究益生菌對仔猪生长发育及免疫力的影响，以期为益生菌制剂在猪的使用方法及其合理添加应用提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料 饮水专用复合益生菌购自康源绿洲生物科技（北京）有限公司，主要由乳酸菌、酵母菌、双歧杆菌及其他有益菌组成，有效益生菌含量2.00×1010/mL。
1.2 试验动物 试验选用（35±2）日龄、平均始重为（8.31±0.33）kg的“杜×长×大”三元杂交断奶仔猪1 000头，随机分为试验组和对照组，每组500头，分别在独立猪舍进行饲喂，每栋猪舍24个猪栏，每个猪栏饲养20～25头猪。
1.3 饲粮营养水平及饲养管理
按照不同生长阶段饲喂全价配合饲料，其营养水平见表1。对照组饲喂基础饲粮，自由采食和饮水;试验组为益生菌添加组，饲喂基础饲粮，每1 000 kg饮水中添加1 L的益生菌，自由采食和饮水。猪舍全封闭，采用水帘、风扇降温，全程自动喂料，按照猪场常规免疫程序进行疾病防控。
1.4 样品采集及处理
分别在仔猪进场后第3天和第35天，在试验组和对照组每栏每头猪随机采集5 mL血液，静置2 h后，3 000 r /min、4 ℃下离心10 min，吸取血清于-20 ℃下低温冷藏保存。
1.5 测定指标与方法
分别在仔猪进场当天（第1天）和出栏时称重，回收剩料，计算平均日增重和料重比，每天上午和下午巡栏2次，计算仔猪腹泻率及死亡率。
腹泻率=[腹泻头次总数/（试验仔猪总头数×试验总天数）]×100%（1）
死亡率=（死亡头数/总头数）×100%（2）
1.6 血液生化指标及抗原测定
利用全自动生化分析仪（迈瑞BS400）分别检测血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三酯、总蛋白、白蛋白的含量;利用江莱生物猪免疫球蛋白ELISA试剂盒检测猪免疫球蛋白M（IgM）、免疫球蛋白G（IgG）、免疫球蛋白A（IgA）、白细胞介素2（IL-2）、白细胞介素6（IL-6）的含量。 1.7 数据统计与分析 采用SPSS 17.0統计软件进行方差分析和显著性检验，P<0.05表示差异显著，P<0.01表示差异极显著。
2 结果与分析
2.1 复合益生菌对断奶仔猪生长性能的影响 由表2可知，试验组与对照组平均始重差异不显著（P>0.05），试验结束时试验组平均末重为127.66 kg，比对照组增加8.22%，但差异不显著（P>0.05）。试验组平均日增重877.21 g，比对照组增加8.85%，且差异显著（P<0.05）。试验组全程料重比为2.15，比对照组降低了0.20，且差异显著（P<0.05）。这表明在饮水中添加复合益生菌能够较好地改善猪的生长性能，提高仔猪的日增重，降低料重比。
2.2 复合益生菌对仔猪健康状况的影响
复合益生菌对断奶仔猪健康状况的影响见表3。由表3可知，在试验第1～7天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率比对照组分别下降17.3%和33.3%;在试验第8～15天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率比对照组分别下降34.48%和25.00%;在试验第16～30天，试验组仔猪腹泻率和其他疾病发生率较对照组率分别下降59.09%和33.33%。整个试验期间（1～136 d），试验组断奶仔猪腹泻率和其他疾病发生率较对照组分别下降38.09%和37.50%，死亡率降低30%。对照组仔猪腹泻率高于试验组，在第1～7天试验组和对照组仔猪腹泻率均有不同程度升高，在第8～15天仔猪腹泻率逐渐下降，15 d后仔猪处于平稳状态，腹泻和其他疾病偶尔发生。
2.3 复合益生菌对仔猪血清生化指标的影响
复合益生菌对仔猪血清生化指标的影响见表4、5。由表4、5可知，与对照组相比，试验组血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三脂（TG）含量在整个饲喂过程中均差异不显著（P>0.05）。试验组饲喂3 d益生菌后，仔猪血清中总蛋白 （TP）含量达69.25 g/L，比对照组高16.24%，且差异显著（P<0.05）;整个饲养过程中血清总蛋白含量均维持在较高水平。在饲喂35 d后，血清中白蛋白含量为34.86 g/L，比对照组降低13.95%，且差异显著（P<0.05）。
2.4 复合益生菌对仔猪血清免疫指标的影响
复合益生菌对仔猪免疫蛋白含量的影响见表6、7。由表6、7可知，与对照组相比，仔猪饲喂益生菌3 d后血清中白介素-2、IgA的含量均显著高于对照组（P<0.05）;饲喂35 d后，试验组白介素-2、白介素-6、IgG、IgM和IgA的含量均显著高于对照组（P<0.05）。
3 讨论
3.1 益生菌对仔猪生长性能的影响 仔猪提前断奶后由于胃酸分泌不足，肠道菌群微生态平衡被破坏，乳酸菌等有益菌的数量减少，大肠杆菌、沙门氏菌等有害菌的数量增加[6]。陈春月等[7]研究表明猪的饮水量与耗料的比率为2.6时，通过饮水能够迅速增加仔猪肠道中的乳酸菌数量，试验组添加益生菌饲喂3 d后仔猪血清中IL-2、IgA含量均显著高于对照组。肠道微生物种群数量越多，分配的均匀度越高，菌种之间的相互依赖和制约能力越强，抵御外界应激刺激的能力也就越强[8]，试验组通过饮水中添加益生菌能够持续改变仔猪的消化道酸性环境、调节断奶仔猪的肠道菌群平衡、提高其肠道有益菌减少有害菌数量，促进断奶仔猪的肠道发育、提高其饲料消化率和生长性能，试验组断奶仔猪的料重比低于对照组，与麻名汉[9]利用液态发酵饲料饲喂仔猪的研究结果相一致。
3.2 益生菌对仔猪血液生化指标的影响
动物在面对应激反应时体内的物质代谢会发生变化，仔猪在断奶后食物和环境的改变会对仔猪的体内代谢产生较大的影响，血清总蛋白可以反映机体的营养与免疫状况。该研究验中试验组和对照组血清中血糖、总胆固醇、低密度脂蛋白、高密度脂蛋白、甘油三脂含量在整个饲喂过程中差异不显著，试验组血清中总蛋白含量
在试验组饲喂3 d后达到69.25 g/L，试验过程中血清总蛋白含量都维持在较高水平，差异不显著。对照组血清总蛋白含量在整个断奶期间的变化较大，说明对照组受断奶应激的影响较大。这与宋凡等[10]添加0.2%“蜡样芽孢杆菌+乳酸菌+酵母菌”复合菌剂和孙梅等[11]添加芽孢杆菌复合剂对断奶仔猪血清总蛋白的影响结果相同，说明通过饮水添加益生菌对于减少仔猪应激反应具有显著作用。
3.3 益生菌对仔猪血清免疫指标的影响
仔猪受断奶应激的影响，肠道菌群微生态平衡被破坏，益生菌中的乳酸杆菌作为肠道的一种原籍菌，进入肠道后通过竞争性颉颃作用抑制大肠杆菌和沙门氏菌在肠壁细胞上黏附，与肠上皮表面的特异性受体结合，刺激B淋巴细胞产生免疫球蛋白[12]。邓军等[13]给仔猪饲喂益生菌饲料后，发现仔猪肠道中IL-2、IL-6的基因表达量显著提高，益生菌通过刺激肠黏膜上皮细胞，影响细胞因子的生成，激活B淋巴细胞、提高抗体水平。IgG、IgM、IgA是骨髓来源的B淋巴细胞所产生具有抗菌、抗病毒、抗毒素作用的免疫球蛋白[14]，机体的免疫能力可以通过血清中免疫球蛋白的含量来体现，血清中含量的高低可反映机体体液免疫的强弱[15]。该试验结果显示，饮水中添加益生菌后可以显著提高仔猪血清中IL-2、IL-6、IgG、IgM、IgA的含量，说明通过饮水添加益生菌能够增强仔猪的免疫力。
4 结论
综上所述，通过在饮水中添加复合益生菌能够较好地改善仔猪的生长性能，提高仔猪的日增重，降低料重比，降低仔猪的腹泻率，提高仔猪的免疫力。
参考文献
[1]孙健， 乔立东， 雷莉辉， 等.丁酸梭菌对断奶仔猪生长性能及肠道菌群结构的影响[J].黑龙江畜牧兽医， 2019（12）：103-105. [2] 李玉俠， 舒丹平， 张晓杰， 等.发酵饲料替代抗生素在断奶仔猪日粮中的应用[J].饲料博览， 2018（1）：17-20，24.
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[4] 程皇座， 马渭青， 赵旦华， 等.益生菌制剂对生长后期育肥猪生长性能和养分表观消化率的影响[J].黑龙江畜牧兽医， 2019（6）：117-119，122.
[5] 许小友.微生物发酵饲料在养猪生产中的应用[J].吉林农业， 2017（21）：74.
[6] 崔艳红， 韩庆功， 崔艺佳， 等.益生菌复合发酵料对断奶仔猪消化环境、血清生化指标和代谢激素水平的影响[J].西北农业学报， 2018，27（1）：16-23.
[7] 陈春月， 樊薛安，SHAW M I，等.日粮成分对生长猪饮水量的影响[J].国外畜牧学（猪与禽）， 2007，27（6）：25-28.
[8] HOOPER L V，LITTMAN D R，MACPHERSON A J.Interactions between the microbiota and the immune system[J].Science， 2012，336（6086）：1268-1273.
[9] 麻名汉.液体发酵饲料对断奶仔猪肠道健康的影响探究[J].现代畜牧科技， 2017（6）：50.
[10] 宋凡， 曹国文， 戴荣国， 等.复合微生态添加剂对断奶仔猪生产性能与血液生理生化指标的影响[J].饲料工业， 2006，27（8）：36-38.
[11] 孙梅， 张一平， 张宪中， 等.芽孢杆菌制剂对断奶仔猪血液和免疫指标的影响[J].中国畜牧兽医， 2015，42（11）：2991-2998.
[12] 王艳， 皮斌， 张三军.益生菌发酵饲料对仔猪生长和免疫功能的影响[J].兽医导刊，2018（3）：18-19.
[13] 邓军， 李云锋， 杨倩.枯草芽孢杆菌和猪源乳酸杆菌混合饲喂对仔猪肠绒毛发育的影响[J].畜牧兽医学报， 2013，44（2）：295-301.
[14] 杨汉春.动物免疫学[M].北京： 中国农业大学出版社， 2003.
[15] 段雪磊， 巴翠晶， 李得鑫， 等.绞股蓝微粉发酵物对断奶仔猪免疫功能的影响[J].中国兽医学报， 2016，36（11）：1929-1932.