脓毒症急性肾损伤肾脏细胞凋亡通路的研究进展

来源 :中国现代医生 | 被引量 : 0次 | 上传用户:ping996115122xing
下载到本地 , 更方便阅读
声明 : 本文档内容版权归属内容提供方 , 如果您对本文有版权争议 , 可与客服联系进行内容授权或下架
论文部分内容阅读
  [摘要] 脓毒症在重症监护病房(ICU)具有较高的发病率和死亡率,也是ICU患者急性肾损伤(Acute Kidney Injury AKI)发生的首要病因。迄今为止,脓毒症肾功能损伤尚无有效的方法可以防治,主要是脓毒症肾损伤发病过程复杂,且众多因素参与其中,包括肾脏血流动力学改变、炎症介质浸润、肾血管内皮细胞功能紊乱、肾脏细胞凋亡。其中,肾脏细胞凋亡机制,特别是肾小管上皮细胞凋亡可能在脓毒症急性肾损伤中起关键作用。因此,本文主要就脓毒症致AKI肾脏细胞凋亡机制通路进展做一综述,期望为临床治疗脓毒症提供一定帮助。
  [关键词] 脓毒症;急性肾损伤;细胞凋亡;线粒体途径;死亡受体途径;内质网途径
  [中图分类号] R459.7 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2017)02-0165-04
  Research progress of renal cell apoptosis pathway in sepsis acute kidney injury
  ZHANG Wei1 SUN Renhua2 HU Bangchuan2
  1.The Second Clinical Medical College of Zhejiang Chinese Medicine University,Hangzhou 310053, China; 2.Department of Intensive Care Unit, Zhejiang Province People’s Hospital, Hangzhou 310014,China
  [Abstract] Sepsis has high morbidity and mortality in intensive care unit(ICU), and it is also the primary cause of acute kidney injury(AKI) in ICU patients. So far, there is no effective method to prevent and treat sepsis induced renal injury, because the pathogenesis of sepsis induced renal injury are complicated and many of the factors involved in it. Such as, renal hemodynamics changes, inflammatory mediator
  膿毒症在重症监护病房(intensive care unit,ICU)具有较高的发病率和死亡率[1],肾脏是最易受损器官之一,脓毒症也是ICU患者急性肾损伤(acute kidney injury,AKI)发生的首要病因,脓毒症患者一旦合并AKI可加重其疾病的演变过程,增加多脏器衰竭及死亡风险[2]。迄今为止,脓毒症肾功能损伤尚无有效的方法可以防治,主要是脓毒症肾损伤发病过程复杂,且众多因素参与其中,包括肾脏血流动力学改变、炎症介质浸润、肾血管内皮细胞功能紊乱、肾脏细胞凋亡。其中,肾脏细胞凋亡机制,特别是肾小管上皮细胞凋亡可能在脓毒症急性肾损伤中起关键作用[3]。
  1 脓毒症急性肾损伤发病机制
  脓毒症指感染导致宿主机体产生失控反应引起的器官功能障碍[4]。肾脏是脓毒症脏器受累靶器官之一,随着对脓毒症致AKI发病机制的深入研究,目前认为脓毒症致AKI发生受多因素影响,包括炎性瀑布样反应直接损伤[5];肾内皮细胞损伤,微血栓形成[6,7];肾脏血流动力学的改变[5,8,9];免疫功能障碍[10];肾脏细胞凋亡等。尽管关于脓毒症致AKI机制的研究不断深入,但脓毒症AKI患者的预防及预后仍不容乐观。脓毒症致AKI是一个连续性的发病过程,在早期以肾血流再分布异常导致的相对灌注不足以及能量代谢利用障碍为主;其后以肾脏炎症反应和细胞凋亡为主要表现,提示肾脏细胞凋亡可能在脓毒症致AKI中起着关键性作用[11-13]。因此,阐明脓毒症肾脏细胞凋亡机制,可能对脓毒症致AKI的预防、靶向性治疗及改善预后具有重要意义。
  2 肾脏细胞凋亡与脓毒症AKI
  细胞凋亡是由基因调控的程序性细胞死亡,生理性的细胞凋亡对于维持组织器官的结构与功能的稳定非常重要,然而,当病理性的有害因素作用于正常宿主细胞,可导致细胞凋亡失调而使得细胞过度凋亡,引起器官功能障碍和自身免疫性疾病的发生,如脓毒症急性肾损伤[10]。既往观点认为肾缺血及炎症因子打击造成的急性肾小管坏死(acute tubular necrosis, ATN)在脓毒症AKI中起主导作用。然而,近年来众多研究表明脓毒症肾脏损伤主要表现为肾脏细胞凋亡。在脓毒症AKI患者肾活检标本中,Lerolle N等[14]通过光镜观察、TUNEL染色及半胱氨酸天冬酶3(caspase-3)活性检测三种不同的方法证实脓毒症致AKI患者存在广泛的肾小管上皮细胞凋亡。在另一项研究中,用脓毒症患者的血浆刺激体外培养的肾小管上皮细胞和足细胞,可诱导细胞凋亡[15]。然而,脓毒症是通过何种途径引起肾小管上皮细胞凋亡目前尚未完全明确。Cantaluppi V等[16]提出在脓毒症致AKI中以Fas和Caspase家族为核心的细胞凋亡调节通路。目前,多数学者认为脓毒症引起肾脏细胞凋亡主要通过两个经典的细胞凋亡途径:线粒体介导细胞呼吸障碍的内源性途径和死亡受体介导的外源性途径[17]。此外,研究表明近年来新发现的内质网应激启动细胞凋亡途径也参与脓毒症肾脏细胞凋亡。
  3 脓毒症AKI肾脏细胞凋亡通路
  3.1线粒体途径与肾脏细胞凋亡
  细胞凋亡内源性线粒体途径开始于细胞氧化应激的产生,包括ATP生成减少,活性氧(reactive oxygen species,ROS)生成增多,促进一氧化氮(NO)生成。这些细胞应激产物随Bax/Bcl-2蛋白复合物进入线粒体内,后与其他促凋亡基因促进细胞线粒体通透性增加,线粒体膜通透性转换孔(mitochondrial permeability transition pore,MPTP)开放,释放细胞素色C,最终通过激活Caspase-3凋亡效应分子,启动细胞凋亡。   Bcl-2家族蛋白在其中发挥着重要的调节作用,Bcl-2和Bax是该家族中最具代表性的抗凋亡因子和促凋亡因子,在脓毒症中Bcl-2蛋白基因变异和Bax/Bcl-2表达比率增加[18],细胞应激产物与Bax形成复合物,引起线粒体通透性增加,启动细胞凋亡程序。在促红细胞生成素(EPO)治疗脂多糖(LPS)诱导脓毒症致AKI小鼠模型中,脓毒症AKI组肾小管上皮细胞Bax显著性表达增加[19]。Bax通过与线粒体膜上的细胞色素C电压依赖性阴离子通道(voltage-dependent anion channel,VDAC)结合而促进MPTP开放,诱导细胞凋亡。
  位于线粒体内外膜之间的MPTP是线粒体内外信息交流的中心枢纽,是细胞凋亡的生死开关[20]。MPTP开放可致线粒体肿胀、外膜破裂、细胞色素C和凋亡诱导因子释放到胞质,最终导致凋亡的发生。脓毒症时,各种有害因素引起肾脏组织细胞内Ca2 超载、ROS产生增加,促使线粒体膜上的MPTP开放,诱导细胞凋亡的发生,引起细胞损伤、坏死,导致AKI的发生[21-23]。
  Caspase-3是调控线粒体细胞凋亡通路的终结者。MPTP的开放导致促凋亡蛋白如细胞色素C(Cyt-c)从线粒体向细胞质释放,这一过程在细胞凋亡中发挥重要作用。Cytc从线粒体释放进入细胞质,与细胞质中其它两个蛋白Apaf-1和Caspase-9相互作用,启动Caspase活化,激活下游的Caspase-3完成相应底物的剪切,引起细胞凋亡级联反应。采用EPO治疗LPS诱导脓毒症致AKI小鼠模型中,EPO通过与促红细胞生成素受体(EPO-R)结合阻断细胞凋亡线粒体通路,下调Bax/Bcl-xl基因表达,减少细胞色素C(Cytc)释放,抑制Caspase-3表达[19],从而降低肾小管上皮细胞凋亡。
  此外,线粒体作为细胞的能量代谢中心,生成ATP。在某种程度上,细胞ATP水平是区分细胞凋亡与死亡的标志物[24],脓毒症致AKI中ATP的耗竭,糖原合成激酶3β(GSK3β)活性降低,Bax磷酸化作用增强(0.57±0.03 vs 3.54±0.19,P<0.05),Caspase-3酶表达增加,引起肾脏细胞凋亡[25,26],而细胞ATP的快速恢复可阻止细胞凋亡[27],因此能量代谢在细胞凋亡中起着重要的作用。
  因此,线粒体在脓毒症致AKI肾脏细胞凋亡中发挥着关键性作用,是细胞凋亡调控的活动中心。
  3.2 死亡受体途径与肾脏细胞凋亡
  死亡受体是细胞上的一种跨膜蛋白,细胞表面的死亡受体接受胞外的凋亡信号刺激,并对凋亡信号进行传递,进而启动激活细胞内的凋亡机制,导致细胞凋亡。死亡受体均属于肿瘤坏死因子受体(TNFR)超家族,胞内具有蛋白水解功能的“死亡结构域”(death domain,DD)。DD是死亡受体途径的始动效应区,可传递死亡信号。进一步激活下游的Caspase-8,最终通过激活Caspase-3凋亡效应分子,启动细胞凋亡[17]。
  细胞凋亡死亡受体途径启动的关键在于配体与受体的结合激活DD,在脓毒症致AKI中主要的死亡受体/配体组合为Fas/Fas L和肿瘤坏死因子受体-1(TNFR1)/肿瘤坏死因子受体(TNF-α)[28]。体外研究中已表明,将LPS或脓毒症患者的血浆肾实干预肾质细胞,可诱导TNF-α/TNFR1基因表达上调,Caspase-3活性增加,细胞凋亡增多[29]。在LPS诱导脓毒症AKI小鼠模型中,已证实TNFR-1基因敲除小鼠相比较未敲除小鼠较少发生肾脏细胞凋亡和炎性细胞浸润。在最近的两项脓毒症血致AKI小鼠研究中,可见到肾脏细胞凋亡,Fas/FasL和Bax/Bcl-2表达增加[30,31]。在敲除Fas基因的脓毒症致AKI小鼠肾组织中可见FasL溶解,肾小管上皮细胞凋亡减少[32]。Caspase-3是线粒体途径和死亡受体途径的交汇点。在LPS致脓毒症肾损伤小鼠模型中,TNF-α基因及Caspase-3表达增加,促进细胞凋亡,使用依达拉奉后,可明显抑制Caspase-3的表达和肾脏细胞凋亡[33]。
  3.3内质网应激与肾脏细胞凋亡
  脓毒症引起机体的超炎症反应和免疫麻痹,导致内质网的改变,产生内质网应激(endoplasmic reticulum stress,ERS),ERS是一条新的细胞凋亡信号传导通路,称之为内质网相关性死亡(ER-associated death,ERAD)途径。在脓毒症中持续的内质网应激将激活促凋亡编码基因CHOP转录以及活化Caspase-12,激活Caspase家族等下游的凋亡信号分子,从而诱导细胞凋亡。
  ERS即内质网腔内错误折叠、未折叠蛋白质聚集以及细胞内Ca2 离子平衡紊乱等引起细胞内一系列反应。内质网应激是细胞内一种适应性保护机制,但是持续存在或过强时则最终诱导细胞凋亡,造成组织损伤。内质网应激由内质网伴侣分子和内质网應激感受蛋白所介导[34]。ERS伴侣分子表达增加,可提高ERS状态下细胞处理未折叠蛋白或抵御其他细胞应激的能力,在盲肠结扎穿孔的脓毒症大鼠模型中,肾脏组织内质网伴侣分子糖调节蛋白78(glucose regulated proteins 78,GRP78)基因表达显著增加,提示大鼠脓毒症状态下肾脏组织存在内质网应激[35,36]。
  CHOP存在于细胞质内,在内质网应激时被活化而转位至细胞核,是内质网应激相关性细胞凋亡中的重要转录调节因子,它能抑制细胞存活,促进凋亡相关蛋白Bcl-2生成,使得线粒体膜通透性改变,最终诱导细胞凋亡[37]。研究发现CHOP基因敲除能阻止内质网应激诱导的细胞凋亡,Esposito V等[38]报道在LPS诱导脓毒症致AKI小鼠模型中,CHOP基因敲除小鼠肾组织淋巴细胞凋亡水平是野生型小鼠的1.7倍,且AKI程度更重。   Caspase-12活化是ERS介導细胞凋亡的关键途径之一,它定位于内质网外膜,在死亡受体或线粒体凋亡途径中不被活化。Caspase-12被激活,通过激活Caspase-3,导致细胞凋亡。在盲肠结扎穿孔致脓毒症AKI大鼠模型中,CHOP和Caspase-12基因表达增加,提示脓毒症AKI与内质网应激后凋亡途径诱导肾小管上皮细胞凋亡有关[35]。
  4 总结与展望
  细胞凋亡在脓毒症AKI发病机制中的作用为临床干预提供了全新的靶点,Caspase家族为脓毒症致AKI肾脏细胞凋亡3大途径的共同交叉点,理论上Caspase抑制剂阻断细胞凋亡具有较好的临床应用前景,然而,细胞凋亡涉及错综复杂的信号通路网络,脓毒症致AKI细胞凋亡信号通路究竟是以哪种信号通路(线粒体通路、死亡受体通路和内质网通路)为主要的凋亡信号传导通路?或者它们只是一个更加复杂的凋亡信号网络系统中的一部分?因此,未来期望更多的关于脓毒症致AKI细胞凋亡其他途径的研究,从而为临床干预脓毒症AKI提供更多的支持。
  [参考文献]
  [1] 孟东亮,邢海波,茅尧生,等. 中性粒细胞明胶酶相关脂质运载蛋白对脓毒症继发急性肾损伤患者的早期预测价值[J/CD]. 中华危重症医学杂志:电子版,2015,8(4): 224-229.
  [2] Majumdar A. Sepsis-induced acute kidney injury[J]. Indian J Crit Care Med,2010,14(1):14-21.
  [3] Langenberg C,Bagshaw SM,May CN,et al. The histopathology of septic acute kidney injury:A systematic review[J]. Crit Care,2008,12(2):R38.
  [4] Mervyn Singer MD,Frcp,Clifford S,et al. The third international consensus definitions for sepsis and septic shock(sepsis-3)[J]. JAMA,2016,315(8):801-810.
  [5] Gomez H,Ince C,De Backer D,et al. A unified theory of sepsis-induced acute kidney injury:Inflammation, microcirculatory dysfunction,bioenergetics,and the tubular cell adaptation to injury[J]. Shock 2014,4(1):3-11.
  [6] Engelmann B,Massberg S. Thrombosis as an intravascular effector of innate immunity[J]. Nat Rev Immunol 2013,13(1):34-45.
  [7] Meier J,Henes J,Rosenberger P. Bleeding and coagulopathies in critical care[J]. N Engl J Med,2014,370(22):2152-2153.
  [8] Prowle JR,Bellomo R. Sepsis-associated acute kidney injury:Macrohemodynamic and microhemodynamic alterations in the renal circulation[J]. Semin Nephrol,2015,35(1):64-74.
  [9] 韩芳,吴爱萍,孙仁华. 脓毒症急性肾损伤的早期诊断及生大黄的疗效研究[J]. 中国现代医生,2015,53(16):4-7.
  [10] Ayse Kockara,Mansur Kayatas. Renal cell apoptosis and new treatment options in sepsis-induced Acute Kidney Injury[J]. Renal Failure,2013,35(2):291-294
  [11] Lerolle N,Nochy D,Guerot E,et al. Histopathology of septic shock induced acute kidney injury:Apoptosis and leukocytic infiltration[J]. Intensive Care Med,2010,36(3):471-478.
  [12] Havasi A,Borkan SC. Apoptosis and acute kidney injury[J].Kidney Int,2011,80(1):29-40.
  [13] Suh SH,Lee KE,Kim IJ,et al. Alpha-lipoic acid attenuates lipopolysaccharide-induced kidney injury[J]. Clin Exp Nephrol,2015,19(1):82-91.
  [14] Lerolle N,Nochy D,Guérot E,et al. Histopathology of septic shock induced renal injury:Apotosis and leukocytic infiltration[J]. Intensive Care Med,2010,36(3):471-478.   [15] Mariano F,Cantaluppi V,Stella M,et al. Circulating plasma factors induce tubular and glomerular alterations in septic burns patients[J]. Crit Care,2008,12(2):R42.
  [16] Cantaluppi V,Weber V,Lauritano C,et al. Protective effect of resin adsorption on septic plasma-induced tubular injury[J]. Crit Care,2010,14(1):R4.
  [17] Morrell ED,Kellum JA,Pastor-Soler NM,et al. Septic acute kidney injury:Molecular mechanisms and the importance of stratification and targeting therapy[J]. Critical Care,2014,18(5):501-511.
  [18] de Arau’jo Ju’nior RF,Leit?觔o Oliveira AL,de Melo Silveira RF,et al. Telmisartan induces apoptosis and regulates Bcl-2 in human renal cancer cells[J]. Experimental Biology and Medicine,2015,240(1):34-44.
  [19] Tania R,Stoyanoff,Juan S,et al. Amelioration of lipopolysaccharide-induced acute kidney injury by erythropoietin:Involvement of mitochondria-regulated apoptosis[J]. Toxicology,2014,13(21):13-21.
  [20] 李莉,馬涛,胡文全,等. 线粒体在脓毒症淋巴细胞凋亡中的作用[J]. 中华外科杂志,2010,48(16):1243-1246.
  [21] 宣小燕,张爱华,黄松明. 线粒体通透性转换孔与急性肾损伤[J]. 中华肾脏病杂志,2015,31(1):69-72.
  [22] Muthuraman A,Sood S,Ramesh M,et al. Therapeutic potential of 7,8-dimethoxvcoumarin on cisplatin and ischemia/reperffusion injury-induced acute renal failure in rats[J]. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol,2012,385(7):739-748.
  [23] Fernandes MP,Leite AC,Araujo FF,el al. The cratylia mollis seed leetin induces membrane permeability transition in isolated rat liver mitoehondria and a eyelosporine A-insensitive permeability transition in trypanosoma cruzi mitochondria[J]. J Eukaryot Microbiol,2014,61(4):381-388.
  [24] Scorrano L. Keeping mitochondria in shape:A matter of life and death[J]. Eur J Clin Invest,2013,43(8):886-893.
  [25] Wang Z,Havasi A,Gall J,et al. GSK3beta promotes apoptosis after renal ischemic injury[J]. J Am Soc Nephrol,2010,21(2):284-294.
  [26] Kim M,Park SW,Kim M,et al. Selective renal overexpression of human heat shock protein 27 reduces renal ischemia-reperfusion injury in mice[J]. Am J Physiol Renal Physiol,2010,299(2):347-358.
  [27] Birk AV,Liu S,Soong Y,et al. The mitochondrial targeted compound SS-31 re-energizes ischemic mitochondria by interacting with cardiolipin[J]. J Am Soc Nephrol,2013, 24(8):1250-1261.
  [28] Probert L. TNF and its receptors in the CNS:The essential,the desirable and the deleterious effects[J]. Neuroscience,2015,27(8):2-22.
  [29] Jiao Liu,Osama Abdel-Razek,Zhiyong Liu. Role of surfactant proteins A and D in sepsis-induced acute kidney injury[J]. Shock,2015,43(1):31-38.   [30] Zang X,Zheng F,Hong HJ,et al. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin protects renal tubular epithelial cells in hypoxia-reperfusion by reducing apoptosis[J]. Int Urol Nephrol,2014,46(8):1673-1979.
  [31] Mariano F,Cantaluppi V,Stella M,et al. Circulating plasma factors induce tubular and glomerular alterations in septic burns patients[J]. Crit Care,2008,12(2):R42.
  [32] Cantaluppi V1,Weber V,Lauritano C,et al. Protective effect of resin adsorption on septic plasma-induced tubular injury[J]. Crit Care,2010,14(1):R4.
  [33] Lin Liu,Yijin Song,Zhao M,et al. Protective effects of edaravone,a free radical scavenger,on lipopolysaccharide-induced acute kidney injury in a rat model of sepsis[J].Int Urol Nephrol,2015,47(10):1745-1752.
  [34] 葉海燕,马少林. 内质网应激介导脓毒症淋巴细胞凋亡研究进展[J]. 中华急诊医学杂志,2014,23(3):354-356.
  [35] 张敏,严斌. 内质网应激在脓毒症大鼠肾损伤中的作用[J]. 中华实验外科杂志,2015,32(4):821-823.
  [36] Liu L,LI Y,Hu Z,et al. Small interfering RNA targeting Toll-like reeeptor9 protects mice against polymicrobial septic acute kidney injury[J]. Nephron Exp Nephrol,2012, 122(1-2):51-61.
  [37] Tabas I,Ron D. Integrating the mechanisms of apoptosis induced by endoplasmic by endoplasmic reticulum stress[J]. Nat Cell Biol,2011,13(3):184-190.
  [38] Esposito V,Grosjean F,Tan J,et al. CHOP deficiency results in elevated lipopolysaccharide-induced inflammation and kidney injury[J]. Am J Physiol Renal Physiol,2013,304(4):440-450.
  (收稿日期:2016-09-16)infiltration, renal vascular endothelial dysfunction and renal cell apoptosis. Renal cell apoptosis mechanism, especially renal tubular epithelial cell apoptosis may play a key role in sepsis induced AKI. Therefore, this article is mainly on the development of renal cell apoptosis pathway in sepsis induced AKI. We hope to provide some help for clinical treatment of sepsis.
  [Key words] Sepsis; Acute kidney injury; Apoptosis; Mitochondria apoptosis pathway; Death receptor pathway; Endoplasmic reticulum associated death
其他文献
长期以来,语文教学靠的是一个教材、一个大纲、一本教学参考书。因此出现了教语文就是教“教科书”;语文答案“公式化”,不敢越“参考书”半步;语文分析出现“假、大、空”,伴随些许“政治口号”。语文课程设计固化、单一的模式,不仅湮灭了学科自身特有的灵活性和选择性,同时还降低了教师重组教学内容、选择有效教学策略的能力。位于江苏省常州淹城之侧的湖塘实验中学,秉承春秋文化的厚实,发扬吴越人文的灵动,历经十载,形
物理是一门以实验为基础的学科,实验是物理学的基础,回顾物理学的发展历程,可以看出物理实验一直占有举足轻重的地位。注重实验探究,不仅是新课程的基本理念之一,也是新课程的重要目标。然而传统的教学手段和方法过分强调知识的传授,实验教学在日常教学实践中并没有相应地得到加强。  一、目前高中物理实验教学的现状  1.实验资源匮乏,器材陈旧。  由调查可知:有些学校对待物理实验教学重视程度不够,实验经费投入较
在张元媛老师的课堂上,我萌生一个想法:评价语文好课的标准,其实很简单,那就是看学生是否真正读进去了。这里的读进去,是指学生在课堂上真正进入了学习状态,真正走进了文本世界,进而走进作者的内心世界。张老师执教的这堂《小石潭记》,就很好地做到了这一点。她的课堂上学生读得很投入,读的收获也很丰硕:不仅读准了字词,读通了文句,而且读出了情味,读懂了作者;更重要的是学生在读的实践中,收获了读的经验,体验到读的
[摘要] 目的 研究MAPK信号通路对结直肠癌SW480细胞MMP-9表达及细胞侵袭作用的影响。 方法 观察蛋白激酶C激活剂TPA诱导下SW480细胞形态学的改变;蛋白免疫印迹法检测MMP-9、P38MAPK蛋白的表达,zymography法检测MMP-9蛋白的分泌,利用Transwell实验观察细胞侵袭能力。 结果 显微镜下观察,随着TPA浓度的升高,细胞形态逐渐改变成针尖样;蛋白免疫印迹法显示
[摘要] 目的 分析家庭康復护理干预在自闭症儿童社会交往障碍治疗中的应用效果及影响。 方法 将本院2016年10月~2018年7月研究时间段内收治自闭症社会交往障碍患儿共75例纳为研究对象,开展回顾性研究分析。根据家属护理模式的选择将其分为对照组36例、研究组39例。患儿均在常规治疗基础上参与研究,研究期间对照组接受临床标准护理,研究组在对照组护理基础上配合家庭康复护理干预。对比两组护理前后患儿各
[摘要] 目的 探讨CR与MSCT对枢椎齿状突骨折的诊断价值。方法 回顾性分析36例经CR及MSCT检查确诊为枢椎齿状突骨折患者的临床资料。结果 经CR检查检出枢椎齿状突骨折28例(占77.0%);MSCT轴位像上检出30例(占83.3%),MPR图像检出34例(占94.4%),MSCT轴位图像结合MPR图像检出骨折100%。结论 MSCT轴扫与MPR技术的的联合应用的诊断价值优于单独使用CR或M
[摘要] 目的 探讨思维导图健康教育对脑卒中患者出院准备度的影响。 方法 选取2019年5~11月在我科住院的首发脑卒中清醒患者240例为研究对象,随机分为观察组和对照组,各120例。对照组实施传统的健康教育,观察组采用思维导图式的健康教育。比较两组出院准备度、出院指导质量和护理满意度。 结果 观察组出院准备度总分(193.06±8.01)分,对照组出院准备度总分(135.31±11.13)分,两
[摘要] 目的 探討微小RNA-22在食管癌患者血清中的异常表达及其临床意义。 方法 45例食管癌患者血清标本均来自黑龙江省医院2018年1月~2019年3月的门诊及住院患者,均经病理证实。采血前患者均未接受放射治疗和化学药物治疗。45名健康对照者血清标本均来自健康体检者。采用实时定量PCR(Real-time PCR,RT-PCR)法检测食管癌患者和健康对照者血清中miRNA-22的表达水平。分
[摘要] 目的 建立快速、简便、灵敏可以同时测定大鼠体内外“鸡尾酒”探针药物和代谢产物的LC-MS/MS方法,并用于大鼠肝微粒体外代谢和大鼠体内的药代动力学研究。 方法 所有样品均加入乙腈进行沉淀处理,然后在UPLC CORTECS C18(2.1 mm×50 mm,1.6 μm)色谱柱分离,质谱方法采用多反应监测模式(MRM)。液相方法采用梯度洗脱流动相乙腈-0.1%甲酸水。 结果 6种探针药和
[摘要] 目的 探讨诱导化疗 同步调强放化疗 辅助化疗与诱导化疗 调强放疗 辅助化疗在局部晚期鼻咽癌中的疗效。 方法 选择我院2018年1~12月进行治疗的60例局部晚期鼻咽癌患者纳入本研究。按照随机数字表法分为两组,每组各30例。A组行诱导化疗 同步调强放化疗 辅助化疗,B组行诱导化疗 调强放疗 辅助化疗。所有患者均获得18个月随访,比较两组临床疗效、不良反应发生情况、随访期间生存和复发转移情况