【摘 要】
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猪精子经冷冻干燥后,在光学显微镜和电子显微镜下观察其超微结构,并借助辅助生殖技术将其注入猪卵母细胞后,进一步观察受精卵的发育情况。结果表明:海藻糖组雄原核形成率(68.
【机 构】
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四川农业大学生命科学与理学院; 上海农业科学院畜牧兽医研究所; 上海农业遗传育种重点实验室动物遗传工程研究室;
【基金项目】
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上海市农业遗传育种重点实验室开放课题(No.Shagb2008-03);上海市农科院青年科技发展基金(No.2009(15));上海市科技兴农推广项目(No.2007-3-7);转基因生物新品种培育重大专项(Nos.2009ZX08006-014B,2008ZX08006-005);上海市科委科技成果转化项目(No.103919N1800)资助~~
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猪精子经冷冻干燥后,在光学显微镜和电子显微镜下观察其超微结构,并借助辅助生殖技术将其注入猪卵母细胞后,进一步观察受精卵的发育情况。结果表明:海藻糖组雄原核形成率(68.52%)、卵裂率(59.17%)和囊胚率(19.16%)优于EDTA组(64.59%、56.26%和15.62%)和对照组(35.36%、52.33%和8.60%)(P<0.05);海藻糖组的冷冻真空干燥猪精子分别在4℃下保存60、120、180d,雄原核形成率、卵裂率和囊胚率均无显著差异(P>0.05);海藻糖组的冷冻真空干燥猪精子复水化后孵育1h和2h,卵裂率、卵裂率和囊胚率均差异显著(P<0.05);海藻糖处理组与EDTA处理组中的冷冻真空干燥猪精子分别在4℃和-20℃下保存后各处理组间精子形态差异不显著(P>0.05);海藻糖组中B级冷冻真空干燥精子百分数显著多于EDTA处理组(P<0.05)。超微结构分析表明,冷冻真空干燥猪精子的损伤主要表现在顶体和颈部的肿胀与缺损、尾部断裂。
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