论文部分内容阅读
【摘要】 目的：探讨诊断肺癌有效的脱落细胞学检查标本留取方式。方法：选取2010年3月-2013年6月江西省肿瘤医院收治的205例肺癌患者作为研究对象，所有患者均接受痰液脱落细胞学检查，根据脱落细胞学检查标本留取方式将其分为观察组104例和对照组101例，观察组采用超声雾化加拍背导痰的方法留取标本，对照组采用常规留痰的方法留取标本。比较两组患者肺癌细胞检出率。结果：观察组的肺癌细胞检出率明显高于对照组，比较差异有统计学意义（P<0.05）。结论：超声雾化拍背导痰是诊断肺癌有效的脱落细胞学检查标本留取方式，值得在临床上推广。
【关键词】 脱落细胞学； 超声雾化； 痰液； 肺癌
肺癌是目前临床上最常见的恶性肿瘤之一，其发病率与死亡率仍然呈逐年上升的趋势，从而成为全球重要的公共卫生问题[1-3]。早期诊断、早期治疗是提高肺癌患者生存率的关键，众所周知，肺癌的确诊必须依靠病理学检查，通过手术或纤支镜采集标本给患者带来的创伤较大，部分不需要手术治疗的患者通过手术采集标本则让患者术后更加难以接受，在此背景下，痰液脱落细胞学检查成为临床上早期诊断肺癌的重要方法[4]。尽管如此，痰液脱落细胞学检查诊断肺癌的敏感度较低，因此如何提高该方法的诊断敏感度成为肺癌研究的重要课题之一[5-6]。本研究即从标本留取的角度出发，探索提高痰液脱落细胞学检查诊断敏感度的标本留取方式，现报告如下。
1 资料与方法
1.1 一般资料 选取2010年3月-2013年6月本院收治的205例肺癌患者作为研究对象。纳入标准：（1）患者自愿参与本研究，签署知情同意书；（2）经病理检查确诊为肺癌；（3）肿瘤位置为中央型。所有患者均接受痰液脱落细胞学检查，根据脱落细胞学检查标本留取方式将其分为观察组104例和对照组101例，两组患者的性别、年龄、肿瘤大小、肿瘤组织病理学分型、临床分期、咯血等一般资料比较差异无统计学意义（P>0.05），具有可比性，见表1。
1.2 研究方法
1.2.1 观察组 观察组通过超声雾化加拍背导痰留取标本，连续送检3 d，方法如下：（1）嘱患者于清晨先去除口腔唾液、陈腐痰液、鼻腔分泌物，然后再漱口。（2）用50 mL 10%氯化钠注射液给予患者超声雾化10～15 min。（3）对患者进行拍背，用空心手掌由下向上，由外向内拍击患者背部。（4）嘱患者用力咳出深部痰液2～3口。（5）将标本收集于痰盒中，1 h内送检。
1.2.2 对照组 对照组通过常规留痰留取标本，同样连续送检3 d，方法如下：（1）嘱患者于清晨先去除口腔唾液、陈腐痰液、鼻腔分泌物，然后再漱口。（2）嘱患者深呼吸，用力咳出深部痰液2～3口。（3）将标本收集于痰盒中，1 h内送检。
1.3 统计学处理 采用SPSS 19.0软件对所得数据进行统计分析，计量资料用（x±s）表示，比较采用t检验，计数资料采用 字2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
观察组的肺癌细胞检出率72.12%（75/104）明显高于对照组的57.43%（58/101），比较差异有统计学意义（P<0.05）。
3 讨论
肺癌是指起源于支气管黏膜上皮的恶性肿瘤，因此临床上又将其称为支气管肺癌。近几十年来，肺癌发病率在全世界范围内明显增高，在某些欧美国家以及我国部分大城市中，肺癌发病率已居男性各种恶性肿瘤的首位，成为严重影响人类健康的主要疾病之一[7-9]。如前所述，早期诊断对提高肺癌患者生存率有着十分重要的临床意义，目前临床上诊断肺癌的方法较多，不同方法各有其特点，胸部影像学检查在诊断肺癌时主要发挥筛查的作用，其确诊必须依赖细胞学或病理学检查[10]。值得注意的是，病理学检查获取肿瘤细胞的方法较多，如支气管镜、纵隔镜、胸壁穿刺、剖胸探查等，上述方法对患者均有一定程度的创伤，在这种情况下，痰液脱落细胞学检查成为患者青睐的病理学检查方法。
传统上痰液脱落细胞学检查留取标本的方法较为简便，其基本步骤是先去除口腔异物，然后再用力咳出深部痰液送检即可，该方法肺癌细胞的检出率较低，易导致肺癌漏诊[11]，因此临床上亟需探索一种更为有效的标本留取方式，以提高痰液脱落细胞学检查在肺癌诊断中的地位。国内外诸多文献均认为超声雾化可以增加痰液脱落细胞学检查的诊断灵敏度[12-14]，为了在省内推广该技术，在本研究中，观察组患者通过超声雾化加拍背导痰留取标本，对照组患者通过常规留痰留取标本，结果显示观察组的肺癌细胞检出率72.12%（75/104）明显高于对照组的57.43%（58/101），比较差异有统计学意义（P<0.05）。分析其原因，主要是超声雾化对气管黏膜、支气管黏膜具有湿润作用，而且10%氯化钠雾化液使气管黏膜、支气管黏膜处于暂时性高渗状态下，两者综合作用可以刺激黏膜上皮内杯状细胞分泌黏液，在拍背震荡胸壁的作用下，痰液量增加，从而增加肺癌细胞检出率[15]。综上所述，超声雾化拍背导痰是诊断肺癌有效的脱落细胞学检查标本留取方式，值得临床推广应用。
参考文献
[1] Trodella L，Salvati F，Martelli M，et al.Occult mediastinal node involvement in non-small cell lung cancer after negative uptake on PET/CT：ripples through staging and therapy.Case report and critical review[J].Clin Ter，2011，162（6）：559-561.
[2] Dahabreh I J，Trikalinos T A，Paulus J K.Parity and risk of lung cancer in women：systematic review and meta-analysis of epidemiological studies[J].Lung Cancer，2012，76（2）：150-158. [3] Cao J Q，Rodrigues G B，Louie A V，et al.Systematic review of the cost-effectiveness of positron-emission tomography in staging of non-small-cell lung cancer and management of solitary pulmonary nodules[J].Clin Lung Cancer，2012，13（3）：161-170.
[4] Sawabata N，Maeda H，Matsumura A，et al.Clinical implications of the margin cytology findings and margin/tumor size ratio in patients who underwent pulmonary excision for peripheral non-small cell lung cancer[J].Surg Today，2012，42（3）：238-244.
[5] Sanz-Ortega J，Roig F，Al-Mousa M M，et al.17p13 （p53 locus），5q21 （APC locus） and 9p21 （p16 locus） allelic deletions are frequently found in oral exfoliative cytology cells from smoker patients with non-small-cell lung cancer[J].Histol Histopathol，2007，22（5）：541-545.
[6] Hanagiri T，Takenaka M，Oka S，et al.Pleural lavage cytology immediately after thoracotomy in patients with completely resected non-small cell lung cancer[J].Int Surg，2011，96（2）：171-175.
[7] Sousaris N，Mendelsohn G，Barr R G.Lung cancer metastatic to breast：case report and review of the literature[J].Ultrasound Q，2013，29（3）：205-209.
[8] Travis W D，Rekhtman N.Pathological diagnosis and classification of lung cancer in small biopsies and cytology：strategic management of tissue for molecular testing[J].Semin Respir Crit Care Med，2011，32（1）：22-31.
[9] Schramm M，Wrobel C，Born I，et al.Equivocal cytology in lung cancer diagnosis： improvement of diagnostic accuracy using adjuvant multicolor FISH，DNA-image cytometry，and quantitative promoter hypermethylation analysis[J].Cancer Cytopathol，2011，119（3）：177-192.
[10] Walter N D，Rice P L，Redente E F，et al.Wound healing after trauma may predispose to lung cancer metastasis：review of potential mechanisms[J].Am J Respir Cell Mol Biol，2011，44（5）：591-596.
[11] Dasgupta P，Chakrabarti A，Halder D，et al.Results of diagnostic dilemma between lung cancer and sputum negative pulmonary tuberculosis：a retrospective study[J].J Indian Med Assoc，2012，110（12）：898-900.
[12] Chan H P，Hadjiiski L，Zhou C，et al.Computer-aided diagnosis of lung cancer and pulmonary embolism in computed tomography-a review[J].Acad Radiol，2008，15（5）：535-555.
[13] Gil-Bazo I，Casta?ón E，Fusco J P.EGFR mutation testing in nonsmall cell lung cancer patients by using cytology specimens[J].Cancer Cytopatho，2011，119（5）：354.
[14] Steinfort D P，Khor Y H，Manser R L，et al.Radial probe endobronchial ultrasound for the diagnosis of peripheral lung cancer：systematic review and meta-analysis[J].Eur Respir J，2011，37（4）：902-910.
[15] Nishitsuji M，Yamamura K，Matsuoka H，et al.Endobronchial ultrasonic-guided transbronchial needle aspiration （EBUS-TBNA） for lung cancer diagnosis[J].Nihon Kokyuki Gakkai Zasshi，2011，49（10）：729-732.
（收稿日期：2013-10-12） （本文编辑：欧丽）
【关键词】 脱落细胞学； 超声雾化； 痰液； 肺癌
肺癌是目前临床上最常见的恶性肿瘤之一，其发病率与死亡率仍然呈逐年上升的趋势，从而成为全球重要的公共卫生问题[1-3]。早期诊断、早期治疗是提高肺癌患者生存率的关键，众所周知，肺癌的确诊必须依靠病理学检查，通过手术或纤支镜采集标本给患者带来的创伤较大，部分不需要手术治疗的患者通过手术采集标本则让患者术后更加难以接受，在此背景下，痰液脱落细胞学检查成为临床上早期诊断肺癌的重要方法[4]。尽管如此，痰液脱落细胞学检查诊断肺癌的敏感度较低，因此如何提高该方法的诊断敏感度成为肺癌研究的重要课题之一[5-6]。本研究即从标本留取的角度出发，探索提高痰液脱落细胞学检查诊断敏感度的标本留取方式，现报告如下。
1 资料与方法
1.1 一般资料 选取2010年3月-2013年6月本院收治的205例肺癌患者作为研究对象。纳入标准：（1）患者自愿参与本研究，签署知情同意书；（2）经病理检查确诊为肺癌；（3）肿瘤位置为中央型。所有患者均接受痰液脱落细胞学检查，根据脱落细胞学检查标本留取方式将其分为观察组104例和对照组101例，两组患者的性别、年龄、肿瘤大小、肿瘤组织病理学分型、临床分期、咯血等一般资料比较差异无统计学意义（P>0.05），具有可比性，见表1。
1.2 研究方法
1.2.1 观察组 观察组通过超声雾化加拍背导痰留取标本，连续送检3 d，方法如下：（1）嘱患者于清晨先去除口腔唾液、陈腐痰液、鼻腔分泌物，然后再漱口。（2）用50 mL 10%氯化钠注射液给予患者超声雾化10～15 min。（3）对患者进行拍背，用空心手掌由下向上，由外向内拍击患者背部。（4）嘱患者用力咳出深部痰液2～3口。（5）将标本收集于痰盒中，1 h内送检。
1.2.2 对照组 对照组通过常规留痰留取标本，同样连续送检3 d，方法如下：（1）嘱患者于清晨先去除口腔唾液、陈腐痰液、鼻腔分泌物，然后再漱口。（2）嘱患者深呼吸，用力咳出深部痰液2～3口。（3）将标本收集于痰盒中，1 h内送检。
1.3 统计学处理 采用SPSS 19.0软件对所得数据进行统计分析，计量资料用（x±s）表示，比较采用t检验，计数资料采用 字2检验，以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
观察组的肺癌细胞检出率72.12%（75/104）明显高于对照组的57.43%（58/101），比较差异有统计学意义（P<0.05）。
3 讨论
肺癌是指起源于支气管黏膜上皮的恶性肿瘤，因此临床上又将其称为支气管肺癌。近几十年来，肺癌发病率在全世界范围内明显增高，在某些欧美国家以及我国部分大城市中，肺癌发病率已居男性各种恶性肿瘤的首位，成为严重影响人类健康的主要疾病之一[7-9]。如前所述，早期诊断对提高肺癌患者生存率有着十分重要的临床意义，目前临床上诊断肺癌的方法较多，不同方法各有其特点，胸部影像学检查在诊断肺癌时主要发挥筛查的作用，其确诊必须依赖细胞学或病理学检查[10]。值得注意的是，病理学检查获取肿瘤细胞的方法较多，如支气管镜、纵隔镜、胸壁穿刺、剖胸探查等，上述方法对患者均有一定程度的创伤，在这种情况下，痰液脱落细胞学检查成为患者青睐的病理学检查方法。
传统上痰液脱落细胞学检查留取标本的方法较为简便，其基本步骤是先去除口腔异物，然后再用力咳出深部痰液送检即可，该方法肺癌细胞的检出率较低，易导致肺癌漏诊[11]，因此临床上亟需探索一种更为有效的标本留取方式，以提高痰液脱落细胞学检查在肺癌诊断中的地位。国内外诸多文献均认为超声雾化可以增加痰液脱落细胞学检查的诊断灵敏度[12-14]，为了在省内推广该技术，在本研究中，观察组患者通过超声雾化加拍背导痰留取标本，对照组患者通过常规留痰留取标本，结果显示观察组的肺癌细胞检出率72.12%（75/104）明显高于对照组的57.43%（58/101），比较差异有统计学意义（P<0.05）。分析其原因，主要是超声雾化对气管黏膜、支气管黏膜具有湿润作用，而且10%氯化钠雾化液使气管黏膜、支气管黏膜处于暂时性高渗状态下，两者综合作用可以刺激黏膜上皮内杯状细胞分泌黏液，在拍背震荡胸壁的作用下，痰液量增加，从而增加肺癌细胞检出率[15]。综上所述，超声雾化拍背导痰是诊断肺癌有效的脱落细胞学检查标本留取方式，值得临床推广应用。
参考文献
[1] Trodella L，Salvati F，Martelli M，et al.Occult mediastinal node involvement in non-small cell lung cancer after negative uptake on PET/CT：ripples through staging and therapy.Case report and critical review[J].Clin Ter，2011，162（6）：559-561.
[2] Dahabreh I J，Trikalinos T A，Paulus J K.Parity and risk of lung cancer in women：systematic review and meta-analysis of epidemiological studies[J].Lung Cancer，2012，76（2）：150-158. [3] Cao J Q，Rodrigues G B，Louie A V，et al.Systematic review of the cost-effectiveness of positron-emission tomography in staging of non-small-cell lung cancer and management of solitary pulmonary nodules[J].Clin Lung Cancer，2012，13（3）：161-170.
[4] Sawabata N，Maeda H，Matsumura A，et al.Clinical implications of the margin cytology findings and margin/tumor size ratio in patients who underwent pulmonary excision for peripheral non-small cell lung cancer[J].Surg Today，2012，42（3）：238-244.
[5] Sanz-Ortega J，Roig F，Al-Mousa M M，et al.17p13 （p53 locus），5q21 （APC locus） and 9p21 （p16 locus） allelic deletions are frequently found in oral exfoliative cytology cells from smoker patients with non-small-cell lung cancer[J].Histol Histopathol，2007，22（5）：541-545.
[6] Hanagiri T，Takenaka M，Oka S，et al.Pleural lavage cytology immediately after thoracotomy in patients with completely resected non-small cell lung cancer[J].Int Surg，2011，96（2）：171-175.
[7] Sousaris N，Mendelsohn G，Barr R G.Lung cancer metastatic to breast：case report and review of the literature[J].Ultrasound Q，2013，29（3）：205-209.
[8] Travis W D，Rekhtman N.Pathological diagnosis and classification of lung cancer in small biopsies and cytology：strategic management of tissue for molecular testing[J].Semin Respir Crit Care Med，2011，32（1）：22-31.
[9] Schramm M，Wrobel C，Born I，et al.Equivocal cytology in lung cancer diagnosis： improvement of diagnostic accuracy using adjuvant multicolor FISH，DNA-image cytometry，and quantitative promoter hypermethylation analysis[J].Cancer Cytopathol，2011，119（3）：177-192.
[10] Walter N D，Rice P L，Redente E F，et al.Wound healing after trauma may predispose to lung cancer metastasis：review of potential mechanisms[J].Am J Respir Cell Mol Biol，2011，44（5）：591-596.
[11] Dasgupta P，Chakrabarti A，Halder D，et al.Results of diagnostic dilemma between lung cancer and sputum negative pulmonary tuberculosis：a retrospective study[J].J Indian Med Assoc，2012，110（12）：898-900.
[12] Chan H P，Hadjiiski L，Zhou C，et al.Computer-aided diagnosis of lung cancer and pulmonary embolism in computed tomography-a review[J].Acad Radiol，2008，15（5）：535-555.
[13] Gil-Bazo I，Casta?ón E，Fusco J P.EGFR mutation testing in nonsmall cell lung cancer patients by using cytology specimens[J].Cancer Cytopatho，2011，119（5）：354.
[14] Steinfort D P，Khor Y H，Manser R L，et al.Radial probe endobronchial ultrasound for the diagnosis of peripheral lung cancer：systematic review and meta-analysis[J].Eur Respir J，2011，37（4）：902-910.
[15] Nishitsuji M，Yamamura K，Matsuoka H，et al.Endobronchial ultrasonic-guided transbronchial needle aspiration （EBUS-TBNA） for lung cancer diagnosis[J].Nihon Kokyuki Gakkai Zasshi，2011，49（10）：729-732.
（收稿日期：2013-10-12） （本文编辑：欧丽）