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【摘要】目的:探讨过氧化物酶体增殖物激活型受体γ(PPARγ)及配体对JEG-3细胞系凋亡的作用。方法:通过Hoechst33258染色和透射电镜观察15-脱氧-前列腺素J2(15d-PGJ2)作用后细胞形态变化,流式细胞仪检测细胞凋亡的改变。结果:Hoechst染色及透射电镜观察到典型的凋亡细胞形态,流式细胞仪检测结果显示,细胞经不同浓度15-d-PGJ2处理后凋亡率明显增加,与对照比较,差异显著(P<0.05),且呈剂量依赖性关系。结论:PPARγ激动配体15-d-PGJ2可诱导JEG-3细胞发生细胞凋亡,为今后进一步研究PPARγ及配体在滋养细胞凋亡机制中的作用提供理论依据和实验基础。
关键词:配体,细胞,凋亡,作用
中图分类号:R71文献标识码:A
本研究通过荧光染色及透射电镜观察,流式细胞测定分析(FCM)研究PPARγ及配体15-d-PGJ2诱导JEG-3细胞凋亡的情况,以探讨其对JEG-3细胞系凋亡的作用。
1材料与方法
1.1实验对象:JEG-3细胞株购自中国医学科学院细胞库。
1.2实验所用主要试剂和仪器:15-d-PGJ2购自美国Cayman公司。
1.3实验方法
(1)细胞培养:JEG-3细胞接种于FD培养液中,取对数生长期细胞进行实验。(2)细胞凋亡的诱导:将细胞分为对照组和实验组,实验组分别加入浓度为0.1μmol/l、1μmol/l和10μmol/l的15-d-PGJ2,作用24h后诱导细胞凋亡。(3)Hoechst染色:将细胞接种在24孔培养板上,加入处理因素后进行染色、观察并摄片。(4)透射电镜检测:处理细胞24h后制备切片,电子染色后观察凋亡细胞并摄片。(5)流式细胞仪测定:处理细胞24h后,加10μlAnnexin-V-FITC和5μlPI混匀避光室温反应15min后上流式细胞仪检测[1]。
1.4统计分析文中进行数据统计的实验数据均重复三次,实验数据均以均值±标准差( )表示,采用SPSS19.0统计软件进行t检验。
2结果
2.1Hoechst33258荧光染色观察
对照组:荧光染色下见正常细胞核较大,染色质分布均匀,呈弥散微弱均匀荧光,见图1A。
15-d-PGJ2处理组:荧光染色下见部分细胞核固缩变小,细胞核呈致密浓染,部分染色质边缘化,或呈碎块状,可见浓染致密颗粒块状荧光,以及明显核形态变化,见图1B。
2.2透射电镜观察
正常细胞可见胞膜表面有微绒毛,核染色质均匀、松散的分布在细胞核内,如图2A;而经过PPARγ激动配体15-d-PGJ2处理后,部分JEG-3细胞出现凋亡,电镜下观察到凋亡细胞体积缩小,胞膜表面微绒毛消失,核膜断裂,细胞核染色质浓缩,密度增加,聚集成境界分明的块状,见图2B。
2.3流式细胞仪检测
本实验使用Annexin-V-FITC/PI双染流式细胞仪进行检测,能区分正常细胞、早期凋亡细胞、晚期凋亡细胞及坏死细胞。图3中流式细胞图左下象限(LL)表示正常细胞百分率,右下象限(LR)表示早期凋亡细胞,左上(UL)及右上(UR)象限认为是晚期凋亡和坏死细胞。本研究仅对各实验组早期凋亡(LR)的结果进行统计分析。JEG-3细胞经15-d-PGJ2处理24h后,细胞凋亡率明显增加,且随着15-d-PGJ2浓度的增加,细胞凋亡率也逐渐增加,呈剂量依赖关系,见表1。
3讨论
滋养细胞凋亡对正常和异常妊娠都是非常重要的。PPARγ被配体激活在多种细胞系中促进细胞凋亡的观点越来越受到重视,许多妊娠并发症,比如早产、流产、先兆子痫、过期妊娠以及滋养细胞疾病等都与滋养细胞凋亡异常有关[2]。本研究证实PPARγ被配体激活后参与滋养细胞的凋亡,通过本实验为今后进一步研究PPARγ及配体在滋养细胞凋亡机制中的作用提供理论依据和实验基础[3]。
参考文献
[1] 贾瑾,周容.胎盘滋养细胞离子通道及其与子痫前期关系的研究进展[J].实用妇产科杂志.2011年07期
[2] 李慧艳,谢贤和,侯梅.PPARγ在结直肠癌中的表达及临床意义[J].海南医学.2011年12期
[3] 颜建英,姜陵.激活素A和抑制素A在子痫前期和子痫患者中的表达及意义[J].中国妇幼保健,2011年20期
作者简介:张莉,1980.1,女,汉,辽宁沈阳人,博士,主治医师,研究方向:妊娠期高血压疾病
关键词:配体,细胞,凋亡,作用
中图分类号:R71文献标识码:A
本研究通过荧光染色及透射电镜观察,流式细胞测定分析(FCM)研究PPARγ及配体15-d-PGJ2诱导JEG-3细胞凋亡的情况,以探讨其对JEG-3细胞系凋亡的作用。
1材料与方法
1.1实验对象:JEG-3细胞株购自中国医学科学院细胞库。
1.2实验所用主要试剂和仪器:15-d-PGJ2购自美国Cayman公司。
1.3实验方法
(1)细胞培养:JEG-3细胞接种于FD培养液中,取对数生长期细胞进行实验。(2)细胞凋亡的诱导:将细胞分为对照组和实验组,实验组分别加入浓度为0.1μmol/l、1μmol/l和10μmol/l的15-d-PGJ2,作用24h后诱导细胞凋亡。(3)Hoechst染色:将细胞接种在24孔培养板上,加入处理因素后进行染色、观察并摄片。(4)透射电镜检测:处理细胞24h后制备切片,电子染色后观察凋亡细胞并摄片。(5)流式细胞仪测定:处理细胞24h后,加10μlAnnexin-V-FITC和5μlPI混匀避光室温反应15min后上流式细胞仪检测[1]。
1.4统计分析文中进行数据统计的实验数据均重复三次,实验数据均以均值±标准差( )表示,采用SPSS19.0统计软件进行t检验。
2结果
2.1Hoechst33258荧光染色观察
对照组:荧光染色下见正常细胞核较大,染色质分布均匀,呈弥散微弱均匀荧光,见图1A。
15-d-PGJ2处理组:荧光染色下见部分细胞核固缩变小,细胞核呈致密浓染,部分染色质边缘化,或呈碎块状,可见浓染致密颗粒块状荧光,以及明显核形态变化,见图1B。
2.2透射电镜观察
正常细胞可见胞膜表面有微绒毛,核染色质均匀、松散的分布在细胞核内,如图2A;而经过PPARγ激动配体15-d-PGJ2处理后,部分JEG-3细胞出现凋亡,电镜下观察到凋亡细胞体积缩小,胞膜表面微绒毛消失,核膜断裂,细胞核染色质浓缩,密度增加,聚集成境界分明的块状,见图2B。
2.3流式细胞仪检测
本实验使用Annexin-V-FITC/PI双染流式细胞仪进行检测,能区分正常细胞、早期凋亡细胞、晚期凋亡细胞及坏死细胞。图3中流式细胞图左下象限(LL)表示正常细胞百分率,右下象限(LR)表示早期凋亡细胞,左上(UL)及右上(UR)象限认为是晚期凋亡和坏死细胞。本研究仅对各实验组早期凋亡(LR)的结果进行统计分析。JEG-3细胞经15-d-PGJ2处理24h后,细胞凋亡率明显增加,且随着15-d-PGJ2浓度的增加,细胞凋亡率也逐渐增加,呈剂量依赖关系,见表1。
3讨论
滋养细胞凋亡对正常和异常妊娠都是非常重要的。PPARγ被配体激活在多种细胞系中促进细胞凋亡的观点越来越受到重视,许多妊娠并发症,比如早产、流产、先兆子痫、过期妊娠以及滋养细胞疾病等都与滋养细胞凋亡异常有关[2]。本研究证实PPARγ被配体激活后参与滋养细胞的凋亡,通过本实验为今后进一步研究PPARγ及配体在滋养细胞凋亡机制中的作用提供理论依据和实验基础[3]。
参考文献
[1] 贾瑾,周容.胎盘滋养细胞离子通道及其与子痫前期关系的研究进展[J].实用妇产科杂志.2011年07期
[2] 李慧艳,谢贤和,侯梅.PPARγ在结直肠癌中的表达及临床意义[J].海南医学.2011年12期
[3] 颜建英,姜陵.激活素A和抑制素A在子痫前期和子痫患者中的表达及意义[J].中国妇幼保健,2011年20期
作者简介:张莉,1980.1,女,汉,辽宁沈阳人,博士,主治医师,研究方向:妊娠期高血压疾病