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摘要:目的 观察远志皂苷元对阿尔茨海默(AD)大鼠模型海马tau蛋白磷酸化相关酶类表达的影响,并探讨其机理。方法 清洁级SD雄性大鼠60只,随机分为对照组、模型组、多奈哌齐组及远志皂苷元低、中、高剂量组,每组10只。侧脑室注射寡聚体形式的β淀粉样蛋白(Aβ)1-42制备AD大鼠模型,术后给药组给予不同剂量远志皂苷元和多奈哌齐灌胃,对照组和AD模型组给予等量生理盐水灌胃。应用免疫组织化学方法和蛋白印迹法检测海马tau蛋白激酶(GSK-3β、CDK-5)和磷酸酯酶(PP-1、PP-2A)的表达水平。结果 与对照组比较,模型组tau蛋白激酶表达明显升高,磷酸酯酶表达明显降低(P<0.01);与模型组比较,远志皂苷元各剂量组蛋白激酶表达明显降低,磷酸酯酶表达明显升高(P<0.01)。结论 远志皂苷元能调节AD大鼠模型蛋白激酶和磷酸酯酶之间的平衡失调。
关键词:tau蛋白;磷酸化;远志皂苷元;大鼠
中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2012)09-0045-03
阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)以神经原纤维缠结(neurofibrillary tangles,NFTs)和神经炎性斑块(neuritic plaque,NP)为主要病理改变。NFTs与AD患者的痴呆症状密切相关[1],主要由双螺旋丝(pair helical filament,PHF)和营养不良性轴突构成,PHF主要包含高度磷酸化的tau蛋白,因此tau蛋白高度磷酸化是引起AD神经原纤维退行性改变的主要变化[2]。
本研究采用侧脑室注射β淀粉样蛋白(Aβ)1-42大鼠为模型,观察远志皂苷元对tau蛋白激酶和磷酸酯酶活性的影响。
1 实验方法
1.1 动物
清洁级SD雄性大鼠60只,体质量(250±20)g,购自北京维通利华实验动物中心,合格证号:SCXK(京)2007-0001。大鼠分笼饲养于日照/黑暗为12 h/12 h的恒温环境,自由摄食和饮水。
1.2 主要试剂及仪器
Aβ1-42(美国Chemicon公司),一抗GSK-3β、CDK-5、PP-1和PP-2A购自北京中杉金桥生物技术有限公司),辣根过氧化物酶标记的二抗(北京博奥森公司),其他试剂均购自北京化学试剂公司。
1.3 药物
远志皂苷元购自四川维克奇生物科技有限公司(批号11176240003),多奈哌齐购自卫材中国药业有限公司(批号100307A)。
2 实验方法
2.1 分组
根据随机数字表将大鼠随机分为对照组、模型组、多奈哌齐组[0.33 mg/(kg·d)]及远志皂苷元低[500 mg/(kg·d)]、中[750 mg/k(g·d)]、高[1 000 mg/(kg·d)]剂量组,每组10只。
2.2 造模与给药
将粉末状Aβ1-42溶于生理盐水配制成浓度为1 ?g/?L溶液,37 ℃孵育3 d使其变为寡聚体形式。给大鼠腹腔注射10%水合氯醛(4 mL/mg)麻醉后固定于大鼠脑立体定位仪上,暴露前囟,选取前囟向后1.0 mm、向右旁开1.5 mm作为右侧脑室体表穿刺点,用微量进样器自脑表面垂直进针4.0 mm,以1 ?L/min速度缓慢将10 ?L寡聚态Aβ1-42注入侧脑室,注射后留针10 min以使Aβ充分弥散,然后缓慢退针,缝合切口,肌肉注射青霉素20万U预防感染。造模成功后,给药组大鼠分别给予不同剂量远志皂苷元和多奈哌齐灌胃,对照组和模型组给以等量生理盐水灌胃,每日1次,灌胃至1个月时进行免疫组织化学染色和蛋白质印迹分析。
2.3 免疫组化染色
各组大鼠以10%水合氯醛(3.5 mL/kg)腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,左心室插管,同时剪开右心耳,生理盐水灌注,直至眼球、肝脏变白,继以4%中性多聚甲醛灌注固定,迅速取脑,放入含有30%蔗糖的中性多聚甲醛溶液中后固定,待脑组织下沉后,进行冰冻切片,免疫组织化学染色。
采用抗生物素蛋白-生物复合物(ABC)法行免疫组织化学染色,对蛋白激酶GSK-3β和CDK-5、磷酸酯酶PP-1和PP2A的表达进行测定。首先用3%H2O2处理脑片10 min以消除内源性过氧化物酶的影响,然后用5%的山羊血清封闭30 min以消除不确定的抗原。加入兔抗GSK-3β(1∶50)、CDK-5(1∶100)、PP-1(1∶100)和PP2A(1∶100)孵育后,用生物素化的抗兔IgG(1∶200)孵育2 h,然后再用辣根酶标记的链霉卵白素(1∶200)室温孵育2 h,最后与二氨基联苯胺(DAB)显色,光镜下观察,自来水充分冲洗终止,中性树脂封片。采用Kodak图像分析系统及Image-Proplus软件,在10倍物镜下,计算各组海马CA1区域内阳性神经元的表达数目。
2.4 蛋白质印迹分析
将大鼠麻醉后处死,迅速取出双侧海马,称重,按1 ?g/10 ?L的比例加入组织匀浆液进行匀浆后,置于4 ℃离心机内13 000 r/min离心30 min,取上清,检测蛋白浓度,剩余的保存于-70 ℃备用。用前加5×上样缓冲液并混匀,于100 ℃变性5 min。样品蛋白经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,电转移至NC膜,封闭2 h,分别加入一抗和二抗孵育后,应用化学发光法显影。
3 统计学方法
使用SPSS11.0统计软件进行统计分析,实验数据用—x±s表示,组间比较用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
4 结果(见图1、表1)
5 讨论
tau蛋白是一种脑特异性的微管相关蛋白,具有促微管组装和维持微管稳定的重要作用,其功能主要受磷酸化调节。作为一种磷蛋白,在体内外tau蛋白均可被多种蛋白激酶和磷酸酯酶作用,改变其磷酸化状态[3-4]。在AD患者脑中,tau蛋白被异常过度磷酸化,丧失其生物学功能,并自身聚合为成对螺旋细丝,进而形成AD特异性病理改变——NFTs[5]。 tau蛋白的异常磷酸化修饰在AD及其他一些急慢性神经退行性疾病发病中起重要作用,tau蛋白过度磷酸化不仅使其本身促微管组装活性降低,还通过消耗正常tau蛋白和其他微管相关蛋白进一步破坏微管结构,引起轴浆转运障碍,神经元突起断裂,神经元变性解体,继而发生退行性改变,形成NFTs。由NFTs引起的神经元纤维退化在AD发病中起重要作用,与其临床痴呆症状呈平行关系。
蛋白激酶和磷酸酯酶表达平衡对于维持tau蛋白的正常磷酸化具有重要意义。正常情况下,蛋白激酶和磷酸酯酶能够保持动态平衡,各种原因导致蛋白激酶活性升高和/或磷酸酯酶活性下降均会引起tau蛋白发生过度磷酸化。在众多蛋白激酶中,CDK-5和GSK-3β对tau 的磷酸化效率最高[6-8]。磷酸酯酶的作用是催化tau蛋白脱磷酸基,其中活性最强的是PP-2A和PP-1。从调节蛋白激酶和磷酸酯酶的角度改变tau蛋白磷酸化状态也许有助于防治tau蛋白参与的某些神经退行性疾病。
AD属于中医“呆证”、“健忘”等范畴,其发病与虚、痰、瘀三者相关。肾虚为本,痰瘀互阻为标,病位在脑,与心、肝、肾密切相关[9]。肾为先天之本,藏精养神,脑为元神之府,灵机记性皆在脑中。肾精亏虚、脑窍失养、心不藏神、肝失疏泄、痰浊瘀血痹阻经脉均可致神明失养,出现学习记忆及精神等方面的障碍。远志为远志科多年生草本植物远志和卵叶远志的根,具有宁心安神、祛痰开窍、消散痈肿的功效。远志为药,早在《神农本草经》就有记载,李时珍在《本草纲目》称“此草服之能益智强志,故有远志之称”。药王孙思邈将远志列为益智方药的第一味。可见自古医家就把远志当成延年益智的良药。远志成分复杂,远志皂苷元为其主要活性成分之一。研究表明,远志皂苷元在抗衰老、益智、抗氧化等方面显示出独特的药理活性[10]。能够通过抗氧化、清除自由基[11]降低AchE活性,提高脑组织Ach含量,改善老化模型小鼠的学习记忆能力。远志皂苷元能有效预防Aβ对神经元的毒性作用[12]。另外本课题组研究发现,远志皂苷元能够显著对抗二羰基化合物诱导的海马神经元损伤[13]。
本研究采用侧脑室注射Aβ1-42建立AD大鼠模型,通过免疫组化方法检测远志皂苷元对AD大鼠海马神经元tau蛋白磷酸化相关酶类表达的影响,结果显示,AD大鼠海马神经元存在GSK-3β和CDK-5表达异常增高,而PP-1和PP-2A表达下降,经过远志皂苷元治疗后,GSK-3β和CDK-5明显降低,PP-1和PP-2A表达有所升高,说明远志皂苷元可在一定程度上调节蛋白激酶和磷酸酯酶的平衡。下一步我们将继续深入观察远志皂苷元对tau蛋白磷酸化位点的影响。
参考文献:
[1] Giannakopoulos P, Herrmann FR, Bussi?re T, et al. Tangle and neuron numbers, but not amyloid loads, predict cognitive status in Alzheimer’s disease[J]. Neurology,2003,60(9):1495-1500.
[2] Morishima-Kawashima M, Hasegawa M, Takio K, et al. Proline- directed and non-proline-directed phosphorylation of PHF-Tau[J]. J Biol Chem,1995,270(2):823-829.
[3] Gong CX, Lidsky T, Wegiel J, et al. Phosphorylation of microtubule-associated protein tau is regulated by protein phosphatase 2A in mammalian brain[J]. J Biol Chem,2000,275(8):5535-5544.
[4] Saito T, Ishiguro K, Uchida T, et al. In situ dephosphorylation of tau by protein phosphatase 2A and 2B in fetal rat primary cultured neurons[J]. FEBS Letters,1995,376(3):238-242.
[5] Wang JZ, Gong CX, Zaidi T, et al. Dephosphorylation of Alzheimer paired helical filaments by PP-2A and PP-2B[J]. J Biochem,1995, 270(9):4854-4860.
[6] Gong CX, Liu F, Grundke-Iqbal I, et al. Post-translational modifications of tau protein in Alzheimer’s disease[J]. Neural Transm,2005,112(6):813-838.
[7] Pei JJ, Braa KE, Braak H, et al. Distribution of active glycogen synthase kinase-3 beta (GSK-3beta) in brain staged for Alzheimer’s disease neurofibrillary changes[J]. J Neuropathol Exp Neurol, 1999,58(9):1010-1019.
[8] 丁绍红,施建华,尹晓敏,等.PKA、GSK-3β和cdk5对微管相关蛋白tau的位点特异性磷酸化[J].南通大学学报,2006,26(4):235-238.
[9] 尹宗宁.中医药防治老年痴呆症的研究进展[J].中国老年学杂志, 2005,25(3):354.
[10] 姜勇,屠鹏飞.远志研究进展[J].中草药,2001,32(8):759-761.
[11] 孙桂波,邓响潮,李楚华.远志皂苷对H2O2所致PC12细胞损伤的保护作用[J].中药材,2007,30(8):991-993.
[12] Chen Q, Cao YG, Zhang CH. Effect of tenuigenin on cholinergic decline induced by β-amyloid peptide and ibotenic acid in rats[J]. Acta Pharm Sin,2002,37(12):913.
[13] Chen Y, Huang X, Li L, et al. Tenuigenin protects cultured hippocampal neurons against methylglyoxal-induced neurotoxicity[J]. Eur J Pharmacol,2010,645(1-3):1-8.
(收稿日期:2012-02-26,编辑:华强)
关键词:tau蛋白;磷酸化;远志皂苷元;大鼠
中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2012)09-0045-03
阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)以神经原纤维缠结(neurofibrillary tangles,NFTs)和神经炎性斑块(neuritic plaque,NP)为主要病理改变。NFTs与AD患者的痴呆症状密切相关[1],主要由双螺旋丝(pair helical filament,PHF)和营养不良性轴突构成,PHF主要包含高度磷酸化的tau蛋白,因此tau蛋白高度磷酸化是引起AD神经原纤维退行性改变的主要变化[2]。
本研究采用侧脑室注射β淀粉样蛋白(Aβ)1-42大鼠为模型,观察远志皂苷元对tau蛋白激酶和磷酸酯酶活性的影响。
1 实验方法
1.1 动物
清洁级SD雄性大鼠60只,体质量(250±20)g,购自北京维通利华实验动物中心,合格证号:SCXK(京)2007-0001。大鼠分笼饲养于日照/黑暗为12 h/12 h的恒温环境,自由摄食和饮水。
1.2 主要试剂及仪器
Aβ1-42(美国Chemicon公司),一抗GSK-3β、CDK-5、PP-1和PP-2A购自北京中杉金桥生物技术有限公司),辣根过氧化物酶标记的二抗(北京博奥森公司),其他试剂均购自北京化学试剂公司。
1.3 药物
远志皂苷元购自四川维克奇生物科技有限公司(批号11176240003),多奈哌齐购自卫材中国药业有限公司(批号100307A)。
2 实验方法
2.1 分组
根据随机数字表将大鼠随机分为对照组、模型组、多奈哌齐组[0.33 mg/(kg·d)]及远志皂苷元低[500 mg/(kg·d)]、中[750 mg/k(g·d)]、高[1 000 mg/(kg·d)]剂量组,每组10只。
2.2 造模与给药
将粉末状Aβ1-42溶于生理盐水配制成浓度为1 ?g/?L溶液,37 ℃孵育3 d使其变为寡聚体形式。给大鼠腹腔注射10%水合氯醛(4 mL/mg)麻醉后固定于大鼠脑立体定位仪上,暴露前囟,选取前囟向后1.0 mm、向右旁开1.5 mm作为右侧脑室体表穿刺点,用微量进样器自脑表面垂直进针4.0 mm,以1 ?L/min速度缓慢将10 ?L寡聚态Aβ1-42注入侧脑室,注射后留针10 min以使Aβ充分弥散,然后缓慢退针,缝合切口,肌肉注射青霉素20万U预防感染。造模成功后,给药组大鼠分别给予不同剂量远志皂苷元和多奈哌齐灌胃,对照组和模型组给以等量生理盐水灌胃,每日1次,灌胃至1个月时进行免疫组织化学染色和蛋白质印迹分析。
2.3 免疫组化染色
各组大鼠以10%水合氯醛(3.5 mL/kg)腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,左心室插管,同时剪开右心耳,生理盐水灌注,直至眼球、肝脏变白,继以4%中性多聚甲醛灌注固定,迅速取脑,放入含有30%蔗糖的中性多聚甲醛溶液中后固定,待脑组织下沉后,进行冰冻切片,免疫组织化学染色。
采用抗生物素蛋白-生物复合物(ABC)法行免疫组织化学染色,对蛋白激酶GSK-3β和CDK-5、磷酸酯酶PP-1和PP2A的表达进行测定。首先用3%H2O2处理脑片10 min以消除内源性过氧化物酶的影响,然后用5%的山羊血清封闭30 min以消除不确定的抗原。加入兔抗GSK-3β(1∶50)、CDK-5(1∶100)、PP-1(1∶100)和PP2A(1∶100)孵育后,用生物素化的抗兔IgG(1∶200)孵育2 h,然后再用辣根酶标记的链霉卵白素(1∶200)室温孵育2 h,最后与二氨基联苯胺(DAB)显色,光镜下观察,自来水充分冲洗终止,中性树脂封片。采用Kodak图像分析系统及Image-Proplus软件,在10倍物镜下,计算各组海马CA1区域内阳性神经元的表达数目。
2.4 蛋白质印迹分析
将大鼠麻醉后处死,迅速取出双侧海马,称重,按1 ?g/10 ?L的比例加入组织匀浆液进行匀浆后,置于4 ℃离心机内13 000 r/min离心30 min,取上清,检测蛋白浓度,剩余的保存于-70 ℃备用。用前加5×上样缓冲液并混匀,于100 ℃变性5 min。样品蛋白经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,电转移至NC膜,封闭2 h,分别加入一抗和二抗孵育后,应用化学发光法显影。
3 统计学方法
使用SPSS11.0统计软件进行统计分析,实验数据用—x±s表示,组间比较用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
4 结果(见图1、表1)
5 讨论
tau蛋白是一种脑特异性的微管相关蛋白,具有促微管组装和维持微管稳定的重要作用,其功能主要受磷酸化调节。作为一种磷蛋白,在体内外tau蛋白均可被多种蛋白激酶和磷酸酯酶作用,改变其磷酸化状态[3-4]。在AD患者脑中,tau蛋白被异常过度磷酸化,丧失其生物学功能,并自身聚合为成对螺旋细丝,进而形成AD特异性病理改变——NFTs[5]。 tau蛋白的异常磷酸化修饰在AD及其他一些急慢性神经退行性疾病发病中起重要作用,tau蛋白过度磷酸化不仅使其本身促微管组装活性降低,还通过消耗正常tau蛋白和其他微管相关蛋白进一步破坏微管结构,引起轴浆转运障碍,神经元突起断裂,神经元变性解体,继而发生退行性改变,形成NFTs。由NFTs引起的神经元纤维退化在AD发病中起重要作用,与其临床痴呆症状呈平行关系。
蛋白激酶和磷酸酯酶表达平衡对于维持tau蛋白的正常磷酸化具有重要意义。正常情况下,蛋白激酶和磷酸酯酶能够保持动态平衡,各种原因导致蛋白激酶活性升高和/或磷酸酯酶活性下降均会引起tau蛋白发生过度磷酸化。在众多蛋白激酶中,CDK-5和GSK-3β对tau 的磷酸化效率最高[6-8]。磷酸酯酶的作用是催化tau蛋白脱磷酸基,其中活性最强的是PP-2A和PP-1。从调节蛋白激酶和磷酸酯酶的角度改变tau蛋白磷酸化状态也许有助于防治tau蛋白参与的某些神经退行性疾病。
AD属于中医“呆证”、“健忘”等范畴,其发病与虚、痰、瘀三者相关。肾虚为本,痰瘀互阻为标,病位在脑,与心、肝、肾密切相关[9]。肾为先天之本,藏精养神,脑为元神之府,灵机记性皆在脑中。肾精亏虚、脑窍失养、心不藏神、肝失疏泄、痰浊瘀血痹阻经脉均可致神明失养,出现学习记忆及精神等方面的障碍。远志为远志科多年生草本植物远志和卵叶远志的根,具有宁心安神、祛痰开窍、消散痈肿的功效。远志为药,早在《神农本草经》就有记载,李时珍在《本草纲目》称“此草服之能益智强志,故有远志之称”。药王孙思邈将远志列为益智方药的第一味。可见自古医家就把远志当成延年益智的良药。远志成分复杂,远志皂苷元为其主要活性成分之一。研究表明,远志皂苷元在抗衰老、益智、抗氧化等方面显示出独特的药理活性[10]。能够通过抗氧化、清除自由基[11]降低AchE活性,提高脑组织Ach含量,改善老化模型小鼠的学习记忆能力。远志皂苷元能有效预防Aβ对神经元的毒性作用[12]。另外本课题组研究发现,远志皂苷元能够显著对抗二羰基化合物诱导的海马神经元损伤[13]。
本研究采用侧脑室注射Aβ1-42建立AD大鼠模型,通过免疫组化方法检测远志皂苷元对AD大鼠海马神经元tau蛋白磷酸化相关酶类表达的影响,结果显示,AD大鼠海马神经元存在GSK-3β和CDK-5表达异常增高,而PP-1和PP-2A表达下降,经过远志皂苷元治疗后,GSK-3β和CDK-5明显降低,PP-1和PP-2A表达有所升高,说明远志皂苷元可在一定程度上调节蛋白激酶和磷酸酯酶的平衡。下一步我们将继续深入观察远志皂苷元对tau蛋白磷酸化位点的影响。
参考文献:
[1] Giannakopoulos P, Herrmann FR, Bussi?re T, et al. Tangle and neuron numbers, but not amyloid loads, predict cognitive status in Alzheimer’s disease[J]. Neurology,2003,60(9):1495-1500.
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[3] Gong CX, Lidsky T, Wegiel J, et al. Phosphorylation of microtubule-associated protein tau is regulated by protein phosphatase 2A in mammalian brain[J]. J Biol Chem,2000,275(8):5535-5544.
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[5] Wang JZ, Gong CX, Zaidi T, et al. Dephosphorylation of Alzheimer paired helical filaments by PP-2A and PP-2B[J]. J Biochem,1995, 270(9):4854-4860.
[6] Gong CX, Liu F, Grundke-Iqbal I, et al. Post-translational modifications of tau protein in Alzheimer’s disease[J]. Neural Transm,2005,112(6):813-838.
[7] Pei JJ, Braa KE, Braak H, et al. Distribution of active glycogen synthase kinase-3 beta (GSK-3beta) in brain staged for Alzheimer’s disease neurofibrillary changes[J]. J Neuropathol Exp Neurol, 1999,58(9):1010-1019.
[8] 丁绍红,施建华,尹晓敏,等.PKA、GSK-3β和cdk5对微管相关蛋白tau的位点特异性磷酸化[J].南通大学学报,2006,26(4):235-238.
[9] 尹宗宁.中医药防治老年痴呆症的研究进展[J].中国老年学杂志, 2005,25(3):354.
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[11] 孙桂波,邓响潮,李楚华.远志皂苷对H2O2所致PC12细胞损伤的保护作用[J].中药材,2007,30(8):991-993.
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[13] Chen Y, Huang X, Li L, et al. Tenuigenin protects cultured hippocampal neurons against methylglyoxal-induced neurotoxicity[J]. Eur J Pharmacol,2010,645(1-3):1-8.
(收稿日期:2012-02-26,编辑:华强)